上海抗体药物热原检测风险评估

中国药典对 MAT 法热原检测要求 4 复孔，未明确 CV 限值，需结合细胞实验特性合理解读与操作。药典不设 CV 限值的主要原因是：MAT 法基于细胞反应，细胞活性易受环境微小变化（如温度、pH）影响，存在天然不稳定性，过严的 CV 要求可能脱离实际；但实验室可通过积累多批次数据，制定内部 CV 控制范围（如定量上下限 CV≤30%、25%），确保检测重复性。关于 3 复孔的适用性：若长期数据显示 CV 控制良好（如连续 10 批次 CV<20%），且样品为中间过程检测（非 QC 放行），可尝试 3 复孔，但需同步设置加标对照，验证结果可靠性；若为 QC 放行检测，仍建议按 4 复孔操作，符合药典下限要求。对于异常点处理，可采用狄克逊准则（Q 检验）等统计学方法 —— 如某复孔 IL-6 检测值偏离平均值 30% 以上，且无明显操作误差（如加样错误），可判定为异常点并剔除，但需在原始记录中详细说明原因，确保数据可追溯，避免随意剔除导致结果失真。

MAT法热原检测中，标曲信号值偏低或线性不佳是常见问题，需按细胞、标准品、ELISA 检测三环节排查解决。细胞相关问题中，细胞复苏后若未充分混匀导致结团，种板后细胞分布不均，会使局部信号弱，需振荡细胞悬液后再种板；细胞活性差或处理时间超半小时，会降低炎症因子分泌，需严格按说明书操作并缩短处理时间；孵育未达 37℃、5% CO₂条件，细胞活化不足，需确保培养箱参数稳定；细胞悬液若接触外源热原，会引发非特异性反应，操作时需远离热原污染源。标准品问题方面，配制稀释错误会直接导致浓度不准，需核对稀释步骤；振荡时间不足（未按说明书要求）会使内毒素分散不均，需确保振荡充分且 4 小时内使用；标准品降解会导致效价下降，需按推荐条件保存（如 - 20℃冷冻）。ELISA 检测环节，孵育时间短或振荡速度慢会影响抗体结合，可适当延长孵育或提高振荡速度；TMB 显色不足（<3 分钟）会导致信号低，需显色 3-10 分钟，待高浓度点 OD600 达 1.0 时加终止液。

家兔热原试验作为热原检测领域的 “法定传统方法”，被中国药典（ChP）、美国药典（USP）、欧洲药典（EP）均列为法定检测项目，其主要优势在于可通过家兔体温应答筛查所有类型热原，尤其适用于无法排除非内毒素热原污染的高风险产品，如血液制品、放射性质药物及部分生物制剂。然而，家兔热原试验存在明显局限：动物个体差异大，需额外投入时间与成本筛选合格家兔；检测周期长（至少 6 小时），无法满足生物制品快速放行需求；灵敏度较低（对 LPS 检测限≥5EU/kg），与全球倡导的“动物福利3R原则”背道而驰。

在 MAT 热原检测中，单核细胞系与 PBMC（外周血单个核细胞）的检测结果稳定性差异明显。实验结果数据显示，单核细胞系的标曲 R² 达 1.000，各浓度点 CV 值极低（如 ST1 为 0.92%、ST2 为 1.5%），相对偏差均在 5% 以内；而 PBMC 的标曲 R² 为 0.997，部分浓度点 CV 值超 20%（如 ST2 为 39.6%、ST6 为 45.5%），相对偏差高达 171.43%。这种差异源于两者对热原反应的一致性—单核细胞系能稳定释放 IL-6，PBMC 则因供体差异导致 IL-6 释放水平波动，直接影响热原检测结果的重复性，单核细胞系更适配准确的热原定量需求。

MAT法热原检测中，获得标准 S 型标曲需通过显色时机控制与图形调整实现，确保标曲拟合准确。在显色时机控制上，加入 TMB 底物后，孔内颜色会逐渐变蓝，且随反应时间加深，当标准品浓度梯度呈现明显蓝色差异（如高浓度孔深蓝色、低浓度孔浅蓝色）时，即可加入终止液；若仪器含 600nm 波长，可在终止前检测高浓度标准品的 OD600nm 值，当达到 1.0 左右时终止，此时显色反应处于线性期，终止后颜色由蓝变黄，信号强度约增强 3 倍，易形成 S 型曲线。在图形调整上，若标曲拟合后未呈现明显 S 型，可通过调整坐标轴范围优化—如将纵轴（OD 值）范围设为 0-2.5，横轴（热原浓度）设为对数坐标，突出低浓度区的拐点与高浓度区的平台区，使曲线更接近 S 型。此外，标曲配制需确保浓度点单独配制（非连续稀释），避免高浓度标准品污染低浓度点，导致低浓度区信号异常升高，破坏 S 型曲线形态。通过以上方法，可有效提升 S 型标曲的成功率，保障热原定量的准确性。

MAT 法热原检测的稳定性需从细胞、试剂、操作、样品四维度严格把控。细胞层面，细胞活性与纯度直接决定热原响应能力，活性不足会减少炎症因子分泌，纯度低则引入杂细胞干扰；细胞批次间一致性也关键，TLR 受体表达、倍增时间差异会导致结果波动。试剂与耗材方面，标准品效价需溯源国际标准，避免降解影响标曲；试剂盒中细胞因子需质控，防止外源热原污染；培养液、缓冲液及无热原耗材（吸头、西林瓶）若热原控制不当，易引发假阳性。操作上，加样手法要统一（如 8 通道移液器液面一致），孵育需 37℃、5% CO₂稳定环境，试剂配制浓度准确，设备（酶标仪、洗板机）定期校准，操作偏差会直接导致异常。样品层面，自身干扰物质（消除炎症成分、高盐）、pH 偏离 6-8 或微生物污染，会抑制细胞活化或引入外源热原，需针对性预处理。