浙江复杂基质支原体检测使用性验证

支原体 NAT 检测中常见三类问题，其成因多与样品基质、操作规范或污染防控相关。1、样品基质干扰，高浓度 DMSO、人血白蛋白等冻存保护剂，高浓度细胞、DNA 碎片等复杂成分，会抑制检测反应或干扰信号读取。2、检测曲线异常，表现为非特异性扩增图谱，多因引物设计不当、反应条件优化不足或试剂交叉污染导致。3、阴性污染，具体体现为无模板对照（NTC）、阴性对照（NCS）出现翘尾现象，主要源于实验室分区不合理、操作流程不规范（如阴阳性样本交叉处理）、耗材污染或环境气溶胶污染，这些问题均会影响结果判定的准确性，需针对性解决。

支原体检测培养法是生物制剂质量控制的关键环节，湖州申科提供的 USP 支原体培养法检测服务，严格遵循USP<63 mycoplasma tests（culture method）>标准，为生物制剂开发与生产提供可靠保障。该方法适用于检测组织或细胞培养物、消化肉液及其他疑似支原体污染的材料，是确保生物技术产品及生产用材料合规性的必要要求。检测周期约 29 天，流程需满足双重要求：每批次培养基必须进行营养特性测试，确保检测效能；供试品需完成抑制物质检测，若生产方法发生变化可能影响检测结果，需重复该测试，避免抑制成分干扰支原体检出，保障检测结果的准确性与可靠性。

支原体检测 NAT 方法验证需满足全球药典对检测限、专属性、耐用性、可比性等关键指标的要求，且 EP、USP 新草案提出更严格标准。检测限（LOD）方面，EP 要求针对每种支原体确定临界值，需 3 次单独 10 倍梯度稀释、共 24 个检测数据，95% 检出浓度达标；USP 要求标准菌株浓度≤10 CFU/mL 或 100 GC/mL，≥24 次检测数据支持统计分析；ChP 未明确支原体专属要求，但需满足 “微生物检出下限数量” 设定标准。专属性上，EP 建议测试革兰氏阳性菌交叉污染，USP 要求生信分析与实际样品验证结合，ChP 强调外来成分不干扰试验。耐用性方面，EP 需验证试剂浓度、提取与反应程序变化，USP 涵盖设备、反应体系等参数波动。可比性上，EP 要求 NAT 法与药典法 LOD 及特异性对比，替代培养法需达 10 CFU/mL，替代指示细胞法需达 100 CFU/mL，USP 则视样品基质情况要求可比性研究。

取样量的科学设计直接影响支原体检测的代表性与灵敏度，需结合样品总体积、基质特性综合考量。法规建议：产品总体积大于1000mL的按无菌检查法取样，10-1000mL 取总体积的 1%，1-10mL 取 100μL，小于1mL的需采用替代取样方案。实际检测中，取样体积越大，灵敏度越高，但需平衡洗脱液消耗与重复检测需求。此外，支原体兼具胞内胞外生存特性，只检测上清会导致漏检，需采用细胞裂解等处理方式，确保覆盖全部污染靶点，提升检测结果的真实性。

目前支原体检测主要有培养法、指示细胞培养法和核酸扩增技术（NAT）法三类，三者在性能与适用场景上差异明显。培养法作为检测金标准，灵敏度极高，但检测周期长达 28 天，手动操作需数天，依赖较高水平的操作技能，且因使用活菌株作为阳性质控，污染风险高，需在特殊实验室开展，检测前还需进行培养基灵敏度验证。指示细胞培养法为药典认可的传统方法，成本较低，但检测周期仍需 14-20 天，灵敏度偏低，同样存在活菌株污染风险，无法满足快速放行需求。NAT 法（核酸扩增法）检测周期只需 3-7 小时，手动操作时间为数小时，采用灭活菌株降低污染风险，样本需求量少、灵敏度高，但无法区分死菌与活菌，且需要开展充分验证，对操作人员的专业技能有一定要求，已逐步成为生物制药企业产品放行检测的youxia方案。

MycoSHENTEK^® 支原体 DNA 检测试剂盒参照 EP 2.6.7 和 JP XVII 支原体检测相关要求完成全面性能验证，是经过三方室间验证、性能完全符合药典标准的支原体检测试剂盒。该试剂盒检测灵敏度高达 10CFU/mL，可同时替代传统培养法与指示细胞培养法，大幅缩短检测周期。经实验验证，其对鸡滑液支原体、猪鼻支原体、莱氏无胆甾支原体等多种常见污染菌株的检出率均达到 100%（24/24），即使对口腔支原体等低浓度菌株，检出率也满足 95% 以上。凭借覆盖范围广、灵敏度高、性能稳定、合规性强的关键优势，该试剂盒为生物制品企业提供了高效、可靠的支原体检测工具，助力企业满足全球监管要求并保障产品质量。