采用opti-MEM和Lipo3000分别转染含有目的基因的pMSCV-eGFP、VSV、GAG质粒及对照载体，每皿加入脂质体-质粒转染混悬液按购买脂质体相关说明书操作定量。继续培养24h。2)24小时后，将培养基更换为新鲜的DMEM完全培养基，放进细胞培养箱继续培养48~72h。3)48~72h后收集上层培养液，并过μm滤膜，采用ELISA法对所获得的慢载体进行滴度测定。如不及时使用可以冻存于-80℃。3、慢转染1)转染前1天将细胞接种6孔培养板，时细胞的融合率约为50%，前需换液，加入1mLDMEM完全培养基。2)冰浴融化后加入相应体积的液及聚凝胺（Polybrene），混匀后放入37℃孵箱中继续培养3)4h后补充1mL培养基，14h后换液（24h内换液即可）。4)72h后用倒置显微镜观察荧光，监测效率，出现较多荧光时将等量的转染细胞和未转染细胞分别加入等浓度Puromycin（Puromycin或其他筛选浓度需要事先摸索）。5)待未转染细胞全部死亡并且可观察到满意荧光量时，降低Puromycin浓度培养。也可以挑去单克隆细胞株进行进一步培养，以得到满意的稳定表达目的基因的细胞株。6)使用qRT-PCR和Westernblot的方法检测目的基因的表达量和蛋白水平是否显著提高。7)由此可得三组细胞株：a.正常细胞株；b.空载载体的细胞株。细胞转染又分为瞬时转染和稳定转染，瞬时转染是指外源基因进入受体细胞后.宁夏组织科研技术服务服务
RNA各种可逆的化学修饰被认为是一种新的表观遗传调控方式。m6A是真核生物mRNA常见的化学修饰，在调控mRNA稳定性，剪切和翻译方面具有重要的作用。作者使用转录组测序发现了METTL3（甲基转移酶3），一种主要的RNAN6-腺苷-甲基转移酶，在人肝细胞（HCC）和多种实体中高表达。在临床上，METTL3的过度表达与肝细胞患者不良预有关。体外实验证明敲除METTL3会抑制HCC细胞增殖，迁移及克隆形成。体内实验证明敲除METTL3会明显抑制HCC体内成瘤和肺转移。另外，使用CRISPR/dCas9-VP64系统，内源性高表达METTL3会促进HCC细胞在体外和体内生长。通过转录组测序、m6A-Seq、MeRIP-PCR，作者确定了SOCS2（细胞因子信号2的抑制因子）作为METTL3介导的m6A修饰的下游靶基因。敲除METTL3表达会消除SOCS2mRNAm6A修饰并增强SOCS2mRNA表达。m6A介导的SOCS2mRNA降解是依赖于m6A“读取器”蛋白YTHDF2。总之，METTL3在HCC大部分高表达中,并通过m6A-YTHDF2依赖机制抑制SOCS2表达从而促进HCC进展。因此，作者发现了在肝发生过程中表观遗传改变的一种新机制。图4RNA甲基化转移酶METLLT3在肝组织中高表达。湖南豚鼠科研技术服务培养实验干货 | 分子克隆实验——无缝克隆。
科手术设备|细胞/组织支持系统|膜片钳|辅助设备|其它常用耗材烧杯|漏斗|量筒|广口罐|研钵和研杵|手套|移液管|移液器(Pipette)单道手动移液器|单道电动移液器|多道手动移液器多道电动移液器|正置换移液器|瓶口分液器吸头(Tips)滤芯吸头(灭菌)|滤芯吸头(未灭菌)|普通吸头(灭菌)普通吸头(未灭菌)|多道移液器吸头液体工作站吸头|其它瓶(Bottle)离心瓶|称量瓶|存储瓶|比重瓶|血清瓶|滴瓶吸气瓶|细胞培养瓶|培养基瓶|其它瓶(Flask)蓝盖瓶|烧瓶|平底烧瓶|克氏(长颈)烧瓶|碘测定烧瓶|蒸馏烧瓶|容量瓶|过滤瓶|其它管(Tube&Vial)离心管|微离心管|样品储存管|冻存管|反应管聚乙烯保存管|细胞培养管|自动上样管|其它PCR耗材PCR管|PCR条板|PCR板|实时定量PCR毛细管其它微孔板微孔板(96孔)|微孔板(384孔)|微孔板。
m6A修饰图谱构建及作用机制：通过m6A甲基化测序（MeRIP-Seq,miCLIP）构建疾病细胞模型或者发病组织的m6A修饰谱，分析m6A的motif,peaks数量及分布，Peak关联基因的特征，联合RNA-seq研究m6A甲基化与表达的关系。m6A研究思路方案一方案二研究案例1、.(IF=)为研究ALKBH5的m6A作用机制，作者利用芯片和m6A-seq筛选到胶质瘤增殖相关的FOXM1，通过qPCR、WB、免疫荧光、核质分离WB/qPCR、RIP和MeRIP等实验证明ALKBH5通过去甲基化调节FOXM1在GSCs中的表达。为研究ALKBH5对FOXM1的作用是否受其他因子的调节，作者研究了FOXM1的邻近基因，发现lncRNAFOXM1-AS与FOXM1序列互补，且共表达、共定位，进一步通过RIP,RNApulldown等实验证明lncRNAFOXM1-AS促进ALKBH5和FOXM1初级转录本的相互作用。通过细胞实验进一步验证ALKBH5在lncRNAFOXM1-AS的作用下维持FOXM1的表达和细胞增殖，从而维持GSCs的干性。图3ALKBH5敲除细胞中m6A修饰的特征和基因表达的变化2、RNAN6-methyladenosinemethyltransferaseMETTL3promoteslivercancerprogressionHepatology,2017.(IF=)表观遗传改变极大地促进了人类症的发生。传统的表观遗传研究主要集中在DNA甲基化，组蛋白修饰和染色质重构。近。细胞器是细胞内的各种功能结构，如线粒体、内质网、高尔基体等，它们各自承担着不同的生理功能。
原理HE染色主要使用苏木精和伊红这两种染液，其中苏木精碱性染液为蓝色，可以将组织的酸性结构染成蓝紫色（细胞核呈现蓝色；软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝；粘液呈灰蓝）；伊红是一种化学合成的酸性染料，在水中解离成带负电荷的阴离子，易于蛋白质氨基中的正电荷结合使细胞浆染色。细胞浆、肌肉、结缔组织、嗜伊红颗粒等被染成不同程度的红色或粉红色。材料与仪器小鼠、固定液、酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡苏木精染液、伊红酒精溶液、盐酸酒精溶液甘油蛋白粘片剂、中性树胶石蜡包埋机、切片机、恒温箱、蜡杯酒精灯、解剖剪、培养皿、镊子、单面刀片染色缸、盖玻片、载玻片、玻片盘、显微镜温度计、水浴锅步骤一、制作卵巢石蜡切片1、取材小鼠腹腔注射戊巴比妥钠（50mg/kg）进行麻醉，颈椎脱臼法处死小鼠，取出双侧卵巢。取下所需组织，切成一小块3~4mm厚。2、固定、洗涤、脱水（1）将切好的卵巢组织用生理盐水洗一下，使用中性福尔马林固定液固定30~50min。后用流水冲洗3次，每次5min。（2）卵巢组织依次经70%、80%、90%乙醇溶液脱水，各30min。（3）再放入95%、100%乙醇溶液各2次，每次20min。3、透明、透蜡（1）使用纯酒精、二甲苯等量混合液处理组织15min。这项技术可用来将含有上千种不同蛋白质的样品中，分离和浓缩出特定蛋白质。天津组织科研技术服务实验
干货分享｜选对实验室常用培养基DMEM和1640。宁夏组织科研技术服务服务
我们知道WB实验步骤繁琐，一次实验历时也不短，从提蛋白到显影结束可能要三天，我们就讲一下这里面的一些关键环节。一、蛋白提取及变性1、提取蛋白很多经验丰富的WB实验者都深有体会，蛋白提取是影响结重要的环节之一。该过程重要的是防降解和保证蛋白浓度不要太低。防降解主要有两点，一是裂解前注意保持样品处于低温环境中，二是裂解时加入足够的蛋白酶抑制剂。我们习惯先用冰冷的PBS做心脏的体循环灌注，然后冰上取脑，分离各脑区(嗅球，皮层，海马，中脑，小脑，延髓，丘脑，纹状体)后置于，用液氮速冻后转移至-80度冰箱长期保存。接着是保证蛋白浓度，即要加入适量的裂解液，加太少会使蛋白提取不充分，加太多会让蛋白浓度太低，一般经验是这样的，细胞样品例如一个六孔板的细胞加60微升的裂解液，动物组织的话每毫克组织加10微升裂解液。还要加上超声破碎处理，具体方案见讨论部分。如果没有超声破碎仪，那就用1毫升注射器不断抽吸，冰上反复抽吸1分钟左右，注意不要产生过多气泡。(需要灌注取材的视频可以私聊获取，由于文件过大，又比较血腥，不宜直接放到文章里。)2、蛋白变性加入上样缓冲液后100摄氏度煮10分钟，这里的上样缓冲液有两种可选。宁夏组织科研技术服务服务
