细胞转染操作方法:转染,是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入,转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例;化学介导方法很多,如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术;生物介导方法,有较为原始的原生质体转染,和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法,应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术,是目前转染效率较高的方法,同时具有细胞毒性很低的优势。但是,细菌转染方法的准备程序复杂,常常对细胞类型有很强的选择性,在一般实验室中很难普及。通过实验优化合适的转染条件对于转染效率的提高很重要。南京北京细胞高效转染试剂

细胞转染是指将外源分子如DNA,RNA等导入真核细胞的技术。随着分子生物学和细胞生物学研究的不断发展,转染技术已成为研究和控制真核细胞基因功能的常规工具。在研究基因功能、调控基因表达、突变分析和蛋白质生产等生物学试验中,其应用越来越***。那么,罗氏都有哪些转染试剂,其优势都有哪些?图1.细胞转染过程X-tremeGENE9DNA转染试剂简介:X-tremeGENE9DNA转染试剂是脂质和其它成分混合而得的一类多组份试剂,溶于80%乙醇中,经0.2μm滤膜过滤,然后封装于玻璃小瓶中,适用于细胞分析的多种实验。无锡广州细胞高效转染试剂转染试剂与细胞不匹配细胞转染较适合的不是原代细胞。

如何高效率实现细胞转染:阳离子脂质体转染试剂脂质转染试剂,以其适用宿主范围广,操作简便,对细胞毒性小,转染效率高受到研究者们的青睐。脂质体(liposome)是一种人工膜,在水相中形成具有双分子层结构的球形封闭囊泡。脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物,当复合物接近细胞膜时,通过内吞作用形成内体(endosomes)进入细胞,通过缓冲液的作用以及脂质与内体膜融合,增大内体的内部渗透压,使内体结构破坏,释放出核酸。随后DNA复合物被释放进入细胞核内。对于普通细胞系,一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。利用脂质体转染法较重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要因素,通过实验优化合适的转染条件对于转染效率的提高很重要。
细胞转染实验注意事项:1.培养基中的物品物品是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒,但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性,使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性,导致转染效率降低。这时候可以选择Entranster转染试剂,非脂质体试剂,培养基可加物品,避免了细胞染菌。2.设置阳性对照和阴性对照。3.一般在转染24-48h,靶基因即在细胞内表达。根据不同的实验目的,24-48h后即可进行靶基因表达的检测实验。4.如若建立稳定的细胞系,则可对靶细胞进行筛选,根据不同基因载体中所含有的抗性标志选用相应的药物,常用的真核表达基因载体的标志物有潮霉素和新霉素等。细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。

细胞转染为什么不能加血清:不同的细胞及转染试剂要求转染的条件是不同的。较好是在靠前次实验前做一个预实验,比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等细胞,是否加血清,对不同的细胞是有不同的影响的,有些细胞是可以有血清的,有些加血清就会受影响。转染后在6小时左右较好换液且换为有血清的培养基,其一因为普通转染试剂对细胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的细胞的死亡。转染时不加血清是防止血清的干扰作用,转染后可适时加入。加入过早会引起未转染细胞的优势生长,过晚会引起较多细胞死亡。可实时观察1/5细胞变圆的时候加入血清。瞬时表达分析检测未重组质粒DNA上基因的表达。武汉细胞高效转染试剂推荐厂家
建议选择50%~80%区间密度进行细胞转染。南京北京细胞高效转染试剂
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入血清南京北京细胞高效转染试剂
细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧:脂质体转染操作步骤:(1)细胞培养:取6cm细胞皿,向每孔中加入2mL含1~2×105个细胞培养液,37℃CO2培养密度至40%~60%,密度过大,转染后不利筛选细胞。(2)转染液制备:在EP管中制备以下两液(为转染每一个孔细胞所用的量)A液:用不含血清培养基稀释1ug质粒DNA。B液:用不含血清培养基稀释2ul脂质体。分别将A液与B液轻弹混匀,静置5分钟。(3)吸取B液加入至A液中,轻弹混匀。室温中置10-15分钟。(4)转染准备:用1mL不含血清培养液漂洗两次,再加入4mL不含血清培养液。(5)转染:把A/B复合物缓缓加入培养液中,摇匀,37℃温箱置6~...