传统细菌内毒素检查法(BET)只能检测革兰氏阴性菌的 LPS,无法识别革兰氏阳性菌 LTA、真菌酵母多糖、病毒鞭毛蛋白等非内毒素热原,存在漏检风险;同时,部分样品(如脂质体、表面活性剂制剂)会因内毒素吸附导致低内毒素回收(LER),BET法难以准确定量。MAT 法通过单核细胞表面的多种 TLR 受体(TLR1-TLR10),可识别不同类型热原:TLR4 识别 LPS、TLR2/TLR6 识别 LTA 与酵母多糖、TLR5 识别鞭毛蛋白、TLR3 识别病毒 dsRNA 等,实现 “全热原覆盖”。湖州申科生物热原检测试剂盒(MAT法)的验证数据显示,其对不同浓度非内毒素热原均有响应:如 0.1-100μg/mL 鞭毛蛋白可检测到 0.005-0.035EU/mL热原活性,0.1-10μg/mL LTA 对应 0.1-0.7EU/mL 热原活性,1-100μg/mL 雷西莫特(TLR7/8 配体)对应 0.5-3.0EU/mL 热原活性。此外,MAT法检测的是热原的生物活性(而非单纯 LPS 含量),可避免 LER 导致的假阴性,为CGT等高风险产品提供更有保障的热原检测方案。
基于人体免疫机制的 MAT 热原检测,为热原检测提供了新的可靠途径。河北疫苗热原检测
湖州申科生物热原检测试剂盒(MAT 法,货号 1502100)包含完整的检测体系,组分按功能可分为细胞培养类、ELISA 检测类与辅助类,且储存条件明确。细胞培养类组分包括:2-8℃储存的培养液(25mL×2 瓶)、96 孔细胞孵育板,-18℃储存的培养液添加剂(1.5mL×1 管)、细菌内毒素工作标准品,以及需液氮保存的 MAT 细胞(2 支),确保细胞活性与稳定性。ELISA 检测类组分涵盖:2-8℃储存的生物素偶联抗 IL-6 抗体(200×,60μL)、链霉亲和素 HRP 复合物(100×,140μL)、TMB 显色液(12mL)、终止液(6mL),以及抗 IL-6 预包被酶标板(8 孔 ×12 条),无需额外制备抗体,即开即用。辅助类组分包括细菌内毒素检查用水(8mL×1 管)、稀释液(25mL)、浓缩缓冲液(10×,25mL×2 瓶)与封板膜,满足从样品稀释到检测终止的全流程需求。各组分储存条件严格区分,避免因储存不当导致性能下降,保障检测结果可靠。
上海合规性热原检测MAT法PyroSHENTEK热原检测试剂盒采用“单核细胞+ELISA”标准化体系,检测结果稳定、重复性好,数据准确。
MAT法热原检测中,样品与细胞共培养时长需严格控制,以保障炎症因子分泌量稳定。说明书要求共培养 24 小时,虽未明确允差,但实验验证显示,±30 分钟的允差对结果无明显影响 —— 细胞因子(如 IL-6)分泌具有时间依赖性,24 小时左右达到分泌平台期,半小时差异不会导致分泌量大幅波动。若实验室对结果稳定性要求极高(如 QC 放行检测),建议严格按 24 小时操作,避免因时长差异引入误差;若为预实验(如样品稀释倍数摸索),±30 分钟允差可接受,但需在记录中注明实际培养时长。需注意的是,共培养时长不可超过 26 小时或短于 22 小时:过长会导致细胞活性下降(炎症因子分泌减少),过短则未达分泌平台期(检测信号偏低),均可能导致热原浓度低估。此外,培养环境需保持稳定(37℃、5% CO₂),温度波动会影响细胞代谢,间接导致共培养时长的实际效果偏离,因此需定期校准培养箱温度,确保环境条件一致。
MAT法热原检测中,标曲信号值偏低或线性不佳是常见问题,需按细胞、标准品、ELISA 检测三环节排查解决。细胞相关问题中,细胞复苏后若未充分混匀导致结团,种板后细胞分布不均,会使局部信号弱,需振荡细胞悬液后再种板;细胞活性差或处理时间超半小时,会降低炎症因子分泌,需严格按说明书操作并缩短处理时间;孵育未达 37℃、5% CO₂条件,细胞活化不足,需确保培养箱参数稳定;细胞悬液若接触外源热原,会引发非特异性反应,操作时需远离热原污染源。标准品问题方面,配制稀释错误会直接导致浓度不准,需核对稀释步骤;振荡时间不足(未按说明书要求)会使内毒素分散不均,需确保振荡充分且 4 小时内使用;标准品降解会导致效价下降,需按推荐条件保存(如 - 20℃冷冻)。ELISA 检测环节,孵育时间短或振荡速度慢会影响抗体结合,可适当延长孵育或提高振荡速度;TMB 显色不足(<3 分钟)会导致信号低,需显色 3-10 分钟,待高浓度点 OD600 达 1.0 时加终止液。
PBMC(外周血单个核细胞)用于 MAT 检测时供体差异大,IL-6 释放波动明显,标准化难度高于单核细胞系。
MAT 法热原检测的关键机制是 “热原活化单核细胞 TLR 受体,触发炎症因子分泌”,TLR 受体的全覆盖是保障检测无遗漏的关键。不同热原需活化不同 TLR 受体:最常见的内毒素(LPS)主要活化 TLR4,而革兰氏阳性菌的非内毒素热原(如脂磷壁酸)需活化 TLR2/6,真菌多糖活化 TLR2/4,病毒核酸活化 TLR3/7/8 等。因此,MAT 试剂盒配套细胞需具备全覆盖的 TLR 受体表达—湖州申科生物通过 Western blot 验证,其 HL-60 细胞系表达 TLR1-TLR9,可响应各类热原。为进一步验证覆盖能力,申科用不同非内毒素热原配体(如脂磷壁酸、酵母多糖)刺激细胞,结果显示所有配体均能诱导 IL-6 分泌,且呈良好量效关系,证明试剂盒可检出各类热原。若细胞 TLR 受体覆盖不全(如缺失 TLR2),则无法检测革兰氏阳性菌的非内毒素热原,导致漏检风险,因此 TLR 受体的全覆盖是 MAT 法热原检测的关键技术指标之一。
与传统方法相比,MAT 法能更覆盖各类热原,保障产品安全性。高效热原检测合规申报
中国药典规定 MAT 法标曲需 4 个平行孔、浓度点≥4,推荐四参数拟合,r≥0.90。河北疫苗热原检测
革兰氏阳性菌注射剂产品只依赖内毒素检测存在安全风险,需结合热原检测特性制定防控方案。内毒素是革兰氏阴性菌细胞壁的脂多糖成分,而革兰氏阳性菌可产生非内毒素热原(NEPs),如脂磷壁酸,这类物质同样能引发人体发热反应,若只检测内毒素,可能遗漏 NEPs 污染,导致临床用药风险。对此,风险评估需重点关注三点:一是建议开展家兔法与内毒素检测的一致性实验,对比两种方法的检测结果,排查是否存在内毒素未检出但家兔法阳性的情况;二是采用 MAT 法热原检测,其通过单核细胞活化机制,可同时识别内毒素与 NEPs,若 MAT 法检测阳性,需进一步追溯 NEPs 来源;三是若无法排除 NEPs 风险,必须按药典要求补充热原检测(如 MAT 法或家兔法),而非只依赖内毒素检测。尤其对于新药或工艺变更后的产品,需通过多方法验证,确保热原检测覆盖所有潜在致热物质,保障临床用药安全。
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