低内毒素回收(LER)又称内毒素掩蔽,是指无菌制剂(尤其蛋白类生物制剂)进行内毒素检测时,加标内毒素的回收率<50% 的现象,且无法通过稀释排除,区别于传统检测干扰。LER 会导致内毒素污染被低估,已被全球监管机构重点关注:FDA 2013 年要求生物药 BLA 申报时提交 LER 研究报告;EMA 2023 年明确含表面活性剂(如吐温)或螯合剂(如 EDTA)的制剂需提供 LER 数据;中国药典 2025 版 9251 通则也新增 LER 内容,与国际接轨。这些要求促使企业优化内毒素检测流程,避免因 LER 导致的检测偏差,确保药品安全。
内毒素干扰试验回收率需在 50%-200%,验证样品基质不影响内毒素检出。上海非动物源内毒素检测风险评估
血液制品(如白蛋白、免疫球蛋白、凝血因子)来源于人血浆,内毒素污染风险高,且基质中含大量蛋白质、脂质等干扰物质,检测难度较大。传统 LAL 法易受血浆蛋白抑制,需通过预处理去除干扰:如采用三氯乙酸沉淀蛋白、超速离心分离脂质,或使用特定去干扰试剂(如内毒素提取试剂)。此外,血液制品内毒素限值较低,需选用高灵敏度检测方法(如动态显色法,LOD=0.005 EU/mL)。检测过程中需严格区分 “内源性内毒素”(血浆中天然存在)与 “外源性污染”,通过工艺优化(如巴氏灭活、纳米膜过滤)降低外源性内毒素残留,保障临床用药安全。
细菌内毒素检测结果判定湖州申科内毒素检测服务含低内毒素回收,通过不同样品前处理方式搭配多种检测方法,较大程度解决LER问题。
针对单核细胞活化反应测定法(MAT)通过检测内毒素的生物活性,有效规避低内毒素回收(LER)对內毒素检测的影响。其原理是:热原(包括被掩蔽的 LPS)活化单核细胞表面的 TLR 受体,释放 IL-6 等细胞因子,通过 ELISA 检测 IL-6 浓度,结合标准曲线推算热原含量。即使 LPS 因 LER 改变超分子结构,只要仍具生物活性,就能被 MAT 法识别。这种 “检测活性而非结构” 的特性,使 MAT 法成为 LER 场景下内毒素检测的重要补充,与其他方法协同构建高效可靠的热原防控体系。
内毒素检测法规体系正逐步向非动物源试剂倾斜,为重组试剂的应用铺平道路。美国药典(USP)已将重组 C 因子(rFC)和重组级联试剂(rCR)正式收录,于2025 年 5 月纳入 USP-NF,明确要求用户验证重组试剂对特定产品的适用性。欧洲药典(EP)通则 2.6.32 已收录重组 C 因子法,规定注射用水和纯化水可直接采用该方法检测,复杂基质样品需通过验证后使用。日本药原则通过指导原则<G4-4-180>将重组蛋白试剂列为内毒素检测的补充方法。中国药典虽暂未正式收录重组方法,但 9251《细菌内毒素法应用指导原则》为其应用提供了框架。这些法规进展共同构建了重组试剂的合规应用基础。
细菌内毒素试验(BET)是用鲎变形细胞裂解物(LAL)测内毒素的体外方法,LAL 测试获国际药典推荐。
重组级联试剂作为内毒素检测鲎试剂的理想替代方案,其具备的优势有:①优化的G因子级联反应,无G因子旁路干扰。采用基因重组技术表达鲎血细胞中的C因子(Factor C)、B因子(Factor B)和凝固酶原(Proclotting enzyme),无G因子旁路干扰,排除1,3-β-D葡聚糖假阳性风险。②依然采用动态显色法原理,可沿用天然鲎试剂检测设备。重组级联试剂(rCR),与天然鲎(动态显色法)具有相同的操作流程、检测设备、分析方法,用户可以沿用天然鲎的仪器、软件、耗材、人员培训、验收程序等,无需投入额外成本。③具有与天然鲎的相同反应机制,检测结果具有等效性。完全模拟了天然鲎试剂的酶联反应,由3种蛋白组成的级联反应机制提供了信号放大的过程,确保了检测的准确性和灵敏度。湖州申科按照药典要求进行替代方法验证,无缝衔接技术转移,助力用户从方法验证到工艺落地,从数据合规到全球申报。
重组鲎试剂无动物源,支持 3R 原则,批次差异小,适配动态显色法酶标仪。广东化学制药内毒素检测抗干扰方案
动态显色法鲎试剂监测吸光度变化定量内毒素,抗干扰强,适配复杂基质样品检测。上海非动物源内毒素检测风险评估
内毒素检测鲎试剂的反应受pH的干扰。在进行检测时,要调节被测溶液的pH值,使鲎试剂与供试品溶液的混合溶液pH值落在鲎试剂指定的使用pH范围内(一般鲎试剂作用pH值在6.0~8.0范围内)。用于调节pH值的试液或溶液(酸或碱),可采用BET用水配制,并将溶液在无热原容器中储存;必须对试液或溶液进行验证,以证明不含可检出的内毒素并且无干扰因素。调节pH试剂(酸或碱)的添加量,不应该超过供试品的1092。如果超过10%,则在进行计算时,将DH试剂的添加量的系数计算进去。
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