江苏免疫细胞产品支原体检测试剂盒

目前支原体检测主要有培养法、指示细胞培养法和核酸扩增技术（NAT）法三类，三者在性能与适用场景上差异明显。培养法作为检测金标准，灵敏度极高，但检测周期长达 28 天，手动操作需数天，依赖较高水平的操作技能，且因使用活菌株作为阳性质控，污染风险高，需在特殊实验室开展，检测前还需进行培养基灵敏度验证。指示细胞培养法为药典认可的传统方法，成本较低，但检测周期仍需 14-20 天，灵敏度偏低，同样存在活菌株污染风险，无法满足快速放行需求。NAT 法（核酸扩增法）检测周期只需 3-7 小时，手动操作时间为数小时，采用灭活菌株降低污染风险，样本需求量少、灵敏度高，但无法区分死菌与活菌，且需要开展充分验证，对操作人员的专业技能有一定要求，已逐步成为生物制药企业产品放行检测的youxia方案。

此前，支原体检测依赖培养法和指示细胞培养法，这两种传统方法均被各国药典列为基础检测手段，但存在明显短板。培养法作为 “金标准”，需阳性活菌参照，每批次培养基需做灵敏度测试，完整合规检测周期长达 21-35 天；指示细胞培养法同样耗时 14-28 天，难以满足新型生物制品快速上市、短货架期的放行需求。更棘手的是，面对高蛋白等复杂样品基质，传统方法易受干扰或抑制，需额外增加传代培养步骤，导致检测时间再延长 2-3 周，严重影响生产效率，也难以适配新型生物制品的检测场景。

支原体 NAT 检测的样本结果需结合 FAM 信号与 VIC 信号的表现综合判定，同时警惕抑制现象对结果的影响。若 FAM 信号 2 复孔有 1 孔以上 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，VIC 信号 2 复孔 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，判定为阳性；若 VIC 信号 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，则为阳性但存在抑制。若 FAM 信号 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，VIC 信号 2 复孔 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，判定为阴性；若 VIC 信号同样 Ct≥40 或无明显扩增曲线，则阴阳性无法判断且存在抑制。出现抑制现象需重测，重测仍有抑制时，阳性倾向样本可适当稀释，阴性倾向样本需优化提取条件。

湖州申科外源因子全自动核酸检测分析系统打造了 “样本进、结果出” 的高效检测流程，彻底简化支原体检测操作。检测只需一步式加样，最大支持 1mL 样本直接上样，无需复杂前处理，加样后系统自动完成核酸提取与检测，全程 3 小时内即可获取结果，其中样本准备时间不足 5 分钟，检测流程只需 2.5 小时。相比传统方法水浴消化、磁珠分离、洗脱等繁琐步骤，该系统操作极大简化，且配备 UI 触屏控制系统，内置标准化程序，支持扫码启动检测，无需专业 qPCR 操作培训，普通人员经简单指导即可上手。系统采用 4 通道单独运行设计，可同步开展不同样本检测，仪器还支持叠加延展通道，进一步提升检测产能，适配生物药多批次检测需求。

支原体检测 NAT 方法验证需满足全球药典对检测限、专属性、耐用性、可比性等关键指标的要求，且 EP、USP 新草案提出更严格标准。检测限（LOD）方面，EP 要求针对每种支原体确定临界值，需 3 次单独 10 倍梯度稀释、共 24 个检测数据，95% 检出浓度达标；USP 要求标准菌株浓度≤10 CFU/mL 或 100 GC/mL，≥24 次检测数据支持统计分析；ChP 未明确支原体专属要求，但需满足 “微生物检出下限数量” 设定标准。专属性上，EP 建议测试革兰氏阳性菌交叉污染，USP 要求生信分析与实际样品验证结合，ChP 强调外来成分不干扰试验。耐用性方面，EP 需验证试剂浓度、提取与反应程序变化，USP 涵盖设备、反应体系等参数波动。可比性上，EP 要求 NAT 法与药典法 LOD 及特异性对比，替代培养法需达 10 CFU/mL，替代指示细胞法需达 100 CFU/mL，USP 则视样品基质情况要求可比性研究。

湖州申科的支原体培养法样品检测流程严格遵循 USP 标准，步骤规范且逻辑严谨。接种环节：每 100mL 液体培养基接种 10mL 供试品，每类固体培养基接种 0.2mL 供试品；培养条件：置于 36±1℃、5-10% CO₂的湿润环境中培养 28 天。继代培养需在特定时间点开展：接种后第 2-4 天、第 6-8 天、第 13-15 天、第 19-21 天，每次从每种液体培养基中吸取至少 0.2mL，接种至对应固体培养基继续培养不少于 14 天，其中第 20-21 天的继代培养需持续 7 天。观察频率为每 2-3 天一次，若液体培养物出现颜色变化，需立即进行继代培养，再通过与阴阳性对照培养基的对比，完成结果判定，确保检测无遗漏、无偏差。