江苏ELISA法宿主细胞蛋白（HCP）残留检测方法开发

在关键物料开发基础上，湖州申科生物 HCP ELISA 检测试剂盒的开发流程还包含第三大关键阶段 —— 检测体系开发及验证，这一环节直接关系检测方法的可靠性。公司会开展严格的检测体系开发与验证工作，验证方案完全契合 ICH 指导原则及药典中关于分析方法验证的标准要求，确保检测体系的科学性与合规性。同时，为进一步保障产品品质，公司在生产全流程中严格落实物料质量控制，并全程在洁净车间环境中完成生产，从过程管控层面确保试剂盒方法的稳健性、重现性与法规符合性。这套从抗原源头把控，到关键抗体制备，再到检测体系验证与洁净生产的标准化、合规化全流程开发模式，并非单一环节的质量管控，而是形成了完整的品质保障链条，成为湖州申科 宿主细胞蛋白（HCP）残留检测产品品质与可靠性的重点支撑。

全球范围内快速增长的抗体、蛋白类等生物药，均由对应的工程细胞生产制备。在生物制品生产流程中，宿主细胞产生的内源性蛋白（即宿主细胞蛋白，Host Cell Proteins, HCPs），会随不同工艺环节部分残留在终产品中。HCPs 作为外源蛋白，可能在不同程度上诱发机体免疫应答，进而引发过敏反应或其他不良反应；此外，部分残留 HCPs 具备蛋白酶或脂酶活性，可能造成蛋白药物或辅料降解，从而加大药物质量与疗效的不稳定性。基于上述风险，对药物中 HCPs 开展定性与定量检测至关重要。全球主要药典（如美国药典、欧洲药典、中国药典）均针对 HCPs 检测制定了具体要求与标准。

湖州申科生物专注于研发贴合实际生产工艺的商业化宿主细胞蛋白（HCP）残留检测试剂盒，依托不同工艺下 HCP 的差异化分析，针对性推出各细分工艺领域的 HCP 检测试剂盒。实验数据显示：针对 CHO-S 与 CHO-K1 两种宿主细胞，两类细胞共享 2458 种相同 HCP（占比 79.7%），但各自存在 392 种和 236 种特异性 HCP，充分体现工艺差异带来的残留蛋白特异性。进一步对比 B3 表达菌与 K2 克隆菌，尽管二者共享 1489 种相同蛋白（分别占比 88% 和 85%），但仍各自检出 208 种和 258 种独有蛋白，差异率为 12%-15%。这些结果直接证实，不同工艺路线与克隆株选择会影响 HCP 残留谱的构成。据此，湖州申科提出 “工艺定制化检测” 策略：通过准确识别共性与特异性 HCP，针对性研发细分试剂盒产品。

湖州申科生物搭建起专业化宿主细胞蛋白（HCP）残留检测平台，采用 ELISA 技术对宿主细胞蛋白总量展开分析，严格控制 CV 偏差与回收率指标，确保实验结果的真实性，其研发的试剂盒及抗体具备高灵敏度、强特异性等优势。该平台在技术服务层面提供两类关键支撑：一是针对 CHO、大肠杆菌（E.coli）、酵母等多种宿主的 HCP 残留检测服务，可直接输出蛋白残留量与样品回收率数据；二是配套的样品适用性验证体系，借助基质定量下限验证、样品稀释度验证、准确性验证及精密度验证（包含重复性与中间精密度）等多维度检测方案，搭配完整的试剂盒性能报告，保障检测结果的准确性与可溯源性，为生物制品工艺杂质控制提供可靠支持

为更优管控工艺、保障产品质量稳定，各国监管机构均要求提供所用宿主细胞蛋白（HCP）残留检测ELISA试剂盒的抗体覆盖率数据。通常需开展覆盖率分析的场景主要有以下四类：①临床II期后，若仍使用商品化试剂盒，需评估其抗体覆盖率是否能持续满足质量监控需求；②临床III期及后续阶段，若产品研究者开发了平台化或工艺专属型HCP监测方法，此类试剂盒使用前需评估其覆盖率水平与商业化试剂盒覆盖率水平的差异；③申报阶段若未提交覆盖率数据，监管机构可能向企业提出补充提交的要求；④产品上市后，若发生生产场地变更、工艺变更、HCP分析方法变更等情况，研究者需评估变更前后抗体覆盖率水平的差异，以及该差异对药品质量与安全性的影响。

MDCK（Madin-DarbyCanineKidney，马丁达比犬肾上皮细胞）细胞系是源于犬肾的持续性细胞系，广泛应用于流感病毒增殖纯化、流感疫苗生产等过程，作为细胞基质使用。凭借高病毒产量与滴度、无适应性突变、易驯化等优势，MDCK细胞已成为业界公认的流感病毒毒株分离及流感疫苗生产适配细胞系。和其他产品杂质类似，MDCK宿主残留蛋白（HCP）可能对生物制品的安全性与有效性产生不良影响，因此在生产监测、产品放行等环节，需对其开展定量研究并实施严格控制。SHENTEK^®MDCK HCP残留检测试剂盒（一步酶联免疫吸附法），是湖州申科生物自主研发、拥有完全自主知识产权且关键试剂实现全国产化的MDCK HCP通用检测试剂盒。该试剂盒适用于基于MDCK细胞基质的病毒增殖纯化、疫苗生产等过程，可对其中的MDCK宿主残留蛋白进行定量检测，且操作步骤简便快捷、检测专一性高、性能稳定可靠。