浙江医疗器械内毒素检测LER现象

血液制品（如白蛋白、免疫球蛋白、凝血因子）来源于人血浆，内毒素污染风险高，且基质中含大量蛋白质、脂质等干扰物质，检测难度较大。传统 LAL 法易受血浆蛋白抑制，需通过预处理去除干扰：如采用三氯乙酸沉淀蛋白、超速离心分离脂质，或使用特定去干扰试剂（如内毒素提取试剂）。此外，血液制品内毒素限值较低，需选用高灵敏度检测方法（如动态显色法，LOD=0.005 EU/mL）。检测过程中需严格区分 “内源性内毒素”（血浆中天然存在）与 “外源性污染”，通过工艺优化（如巴氏灭活、纳米膜过滤）降低外源性内毒素残留，保障临床用药安全。

样品中的脂质体与表面活性剂，会通过不同机制干扰内毒素检测，需结合基质特性选择处理方式。脂质体的干扰体现在两方面：一是脂质双分子层会包裹内毒素，使其无法与鲎试剂接触，导致假阴性；二是脂质体的胶体性质会干扰凝胶形成（凝胶法）或光度信号读取（浊度 / 显色法）。针对完整脂质体制剂，可先用生理盐水稀释降低脂质体浓度，减少包裹作用；若需彻底释放内毒素，还可使用 DMSO、乙醇或甲醇等溶剂裂解脂质体，暴露被包裹的内毒素。表面活性剂的干扰则源于其对物质结构的改变：既可能破坏内毒素的聚集体结构，影响其活性；又可能导致鲎试剂中蛋白质变性，抑制反应。对此，可通过内毒素检查用水或生理盐水稀释样品，降低表面活性剂浓度，消除其对结构的破坏作用。这些针对性处理能有效解决脂质体与表面活性剂的干扰，确保内毒素检测结果真实可靠。

针对单核细胞活化反应测定法（MAT）通过检测内毒素的生物活性，有效规避低内毒素回收（LER）对內毒素检测的影响。其原理是：热原（包括被掩蔽的 LPS）活化单核细胞表面的 TLR 受体，释放 IL-6 等细胞因子，通过 ELISA 检测 IL-6 浓度，结合标准曲线推算热原含量。即使 LPS 因 LER 改变超分子结构，只要仍具生物活性，就能被 MAT 法识别。这种 “检测活性而非结构” 的特性，使 MAT 法成为 LER 场景下内毒素检测的重要补充，与其他方法协同构建高效可靠的热原防控体系。

实验数据充分证明，内毒素检测重组级联试剂（rCR）与天然鲎试剂的检测结果具有高度等效性，可实现方法无缝切换。对细胞培养辅料、冻干甲型肝炎疫苗、单抗 A/B 等 8 类代表性样品的平行检测显示，rCR 的检测平均值为 0.001-0.026EU/mL，天然鲎试剂为 0.002-0.034EU/mL，两者偏差≤0.003EU/mL。加标回收率方面，rCR 为 70%-175.4%，天然鲎试剂为 82.2%-156.6%，均处于 50%-200% 的合格范围。批内精密度上，rCR 的 CV 值为 0.524%-14.716%，天然鲎试剂为 0.908%-12.348%，均满足法规对精密度的要求。这种等效性确保了实验室在切换至重组试剂时，历史数据和工艺控制标准的连续性，降低方法转换风险。

当实验室更换内毒素检测方法或更换试剂供应商时，需进行方法比对与桥接验证。比对实验需选取至少 3批代表性样品，分别用新旧方法检测，计算结果相关性（如相关系数 R²≥0.95）和偏差（≤20%）。桥接验证还需评估新方法的特异性、灵敏度是否与旧方法一致，如确认对高风险样品（如含 β- 葡聚糖的样品）的抗干扰能力相当。若方法变更涉及法规申报产品，需将验证数据纳入申报资料，证明变更后方法仍能有效控制内毒素风险，符合 FDA、NMPA 等监管机构对方法变更的合规性要求。

医疗器械（如输液器、注射器、植入式设备）若携带内毒素，可能通过血液、组织接触引发异常反应或炎症反应。其检测需遵循 “模拟临床使用” 原则：采用浸提液（如 0.9% 氯化钠溶液或注射用水）在 37℃±1℃下浸提器械表面内毒素，再通过 LAL 或 rFC 法检测浸提液。不同器械的内毒素限值差异明显：一次性输液器需≤0.5 EU/device，植入式心脏瓣膜则要求更严格（≤0.06 EU/device）。检测时需注意器械材质对浸提效率的影响，如塑料类器械可能吸附内毒素，需优化浸提时间（通常≥1 小时）或采用超声辅助提取，确保残留内毒素被充分检出。