北京Vero宿主细胞蛋白（HCP）残留检测

湖州申科生物CHO-K1HCP残留检测试剂盒（一步酶联免疫吸附法），采用固相酶联免疫吸附法原理，可对CHO-K1细胞生产的生物制品中宿主残留蛋白进行定量检测。检测时，向预包被抗CHO-K1HCPs绵羊多抗的酶标板中，加入校准品或待测样品、HRP标记的抗CHO-K1HCPs绵羊多抗共同孵育。洗涤后加入TMB底物显色，随后用终止液终止酶促反应；再用酶标仪在450nm波长下测定吸光度，该吸光度与校准品或待测样品中HCPs浓度呈正相关，依据校准品拟合的剂量-反应曲线，即可算出待测样品中HCPs的浓度。该试剂盒对待测样品无需特殊处理，通过合适稀释比例的适用性验证，即可直接使用。且试剂盒操作步骤少、检测快速，同时具备专一性强、性能稳定可靠的特点。

为何定制化试剂盒会成为宿主细胞蛋白（HCP）残留检测的优先选择？关键原因与检测准确性、药物安全性紧密关联。HCP ELISA 检测属于多分析物检测技术，其检测结果的准确性，高度依赖校准品品质、抗体质量及检测方法的构建。定制化 HCP ELISA 检测试剂盒的主要优势，在于其依托更具代表性的 HCP 抗原对动物进行免疫，由此制备的 HCP 抗体针对性更突出。这类针对性抗体可大幅降低 HCP 漏检风险，特别是针对生产工艺中特有的高风险 HCP 因子，能呈现更优的检出成效，为药物的安全性、有效性及质量可控性提供坚实保障。

昆虫细胞杆状病毒表达系统（IC-BEVS）是一种真核表达系统，以杆状病毒为外源基因载体，以昆虫细胞为宿主实现外源蛋白的生产。该系统具备便于规模化生产、培养成本低、生物安全性高等优势，近年已逐步应用于重组蛋白、rAAV 载体、亚单位疫苗（如病毒样颗粒（VLP）疫苗）等产品的生产，在生物制品重组蛋白表达领域已得到广泛应用。Sf9 细胞系源自草地夜蛾细胞系（Spodoptera frugiperda cell line，简称 Sf），是当前较为常用的昆虫细胞系之一。SHENTEK^® Sf9 HCP 残留蛋白检测试剂盒（一步酶联免疫吸附法），可对采用 Sf9 细胞系生产的生物制品中宿主细胞蛋白（HCP）残留进行定量检测。该试剂盒的抗体覆盖率分别为 70.4%-96.0%（采用 IMBS-2D 法）和 91.2%（采用 IMBS-MS 法，Unique Peptide ≥2）。

各国法规要求对生物药品开展分析与纯化处理，以将宿主细胞蛋白（HCP）降至可接受水平；即便终产品中痕量 HCP 进入患者体内，目前仍不明确特定残留蛋白质杂质是否会对药物的稳定性或免疫原性产生影响。在 HCP 限量标准方面，美国药典推荐终产品 HCP 水平为 1-100 ng/mg；中国药典各论则明确，大肠杆菌（E.coli）菌体 HCP 需不高于蛋白质总量的 0.10%（即 1000 ng/mg），CHO 细胞 HCP 需不高于蛋白质总量的 0.05%（即 500 ng/mg），假单胞菌 HCP 需不高于蛋白质总量的 0.02%（即 200 ng/mg）。

依据美国药典 1132 章节规定，HCPs 校准品需具备代表性，能够覆盖实际产品生产工艺中的 HCPs。结合 HCP 免疫检测方法的使用目的与预期风险管理需求，为满足工艺开发、验证需求，同时应对下游工艺可能出现的异常失效或工艺变更情况，建议选用上游发酵工艺末端（如澄清处理后的工艺点）的样本作为 HCPs 来源。实际制备时，可采用空细胞或空载细胞，在模拟实际工艺的预设条件下采集样本，再通过二维电泳、高分辨率质谱等蛋白质组学技术，对模拟工艺与实际工艺下 HCPs 的代表性开展表征分析。越靠近下游工艺，HCPs 的蛋白种类越少，虽更接近成品（DS）中的 HCPs，但这类样本可能无法满足工艺开发与验证需求，也难以覆盖工艺潜在风险，因此通常不推荐使用，或只作为上游工艺 HCPs 免疫检测方法的辅助材料。

宿主细胞蛋白（HCPs）是生物制品生产过程中产生的重要工艺相关杂质，不仅可能引发患者不良免疫反应、超敏反应，还可能造成产品蛋白降解等问题，进而影响生物制品的安全性与有效性，因此成为生物制品质量控制中的关键指标。目前 HCPs 残留检测的常用方法为 ELISA 法，该方法操作简便、灵敏度高且检测通量较高，是 HCPs 残留的日常放行检测方法，各国药典均对采用酶联免疫法开展 HCPs 残留检测作出规定。不过，采用 ELISA 法检测 HCPs 残留仍存在不少挑战：在实际生产工艺中，宿主细胞来源、生产工艺路线、纯化技术、生产规模等因素，均可能改变 HCPs 的种类与复杂程度，给检测带来不确定性。