湖南热原检测MAT试剂盒

单核细胞活化反应测定（MAT）是近年来热原检测领域的突破性技术，其原理基于人体免疫系统对热原的天然应答机制：人源单核细胞（如 THP-1 细胞系或新鲜人全血单核细胞）在热原刺激下，会活化胞内炎症信号通路，释放 IL-6、TNF-α 等促炎细胞因子，通过 ELISA 检测细胞因子的浓度，即可间接反映样品中热原的总量与活性。与传统检测方法相比，MAT 法具备三大不可替代的优势：一是广谱性，可同时检测细菌内毒素、病毒、真菌毒素、支原体等所有类型热原，填补了鲎试验法只能检测内毒素的 “非内毒素热原盲区”，尤其适用于疫苗、基因治疗产品等易受多种热原污染的高风险产品；二是人源相关性，采用与人体同源的细胞模型，检测结果更贴近临床实际热原反应，避免家兔试验中动物种属差异导致的误判；三是高灵敏度，对细菌内毒素的检测限可达 0.0125EU/mL，对非内毒素热原（如酵母多糖、腺病毒）的检测限低至 ng/pg 级，满足低限值产品的质控需求。

MAT 试剂盒配套的即用型细胞存在明确的传代限制，且商业化传代需获得授权，关键是保障细胞质量与检测可靠性。首先，即用型细胞经特殊工艺优化，已处于较好的活性与热原响应状态，不适合传代，传代后细胞会出现 TLR 受体表达下降、炎症因子分泌减少等问题，导致热原检测灵敏度降低，如 HL-60 细胞传代超过 5 代后，IL-6 分泌量下降 30%，无法满足检测要求。其次，若用户需将即用型细胞用于商业化生产（如大规模检测），需获得湖州申科授权，包括用户资质审核、技术培训、传代方案验证，确保用户具备细胞培养与质量控制能力，避免未经授权传代导致细胞特性改变，影响检测结果一致性。此外，参考文献数据，即使是可传代的单核细胞系，使用代次也不超过 20 代，超过后代次细胞稳定性差，因此即用型细胞设计为 “一次性使用”，从源头避免传代带来的风险。用户需严格遵守传代限制，若需长期使用，建议定期采购新批次试剂盒，确保细胞质量。

热原是能引发恒温动物体温异常升高的物质总称，主要成分为细菌内毒素（革兰氏阴性菌脂多糖 LPS），同时涵盖病毒、真菌毒素、支原体等非内毒素热原，其检测是保障药品与医疗器械安全性的关键环节。当前热原检测已形成 “特异性检测 + 广谱筛查” 互补的完整体系：以鲎试验法（含天然 LAL 与重组 rCR/rFC 试剂）作为细菌内毒素的特异性检测手段，凭借 fg 级灵敏度成为制药行业常规质控方法，可通过凝胶法实现定性、动态浊度 / 显色法完成定量；以家兔热原试验作为传统广谱筛查方法，虽操作繁琐（需预试筛选基础体温稳定家兔，正式试验观察 3 小时体温变化），但仍是放射性质的药物、血液制品等高风险产品排除非内毒素热原的补充手段；以单核细胞活化反应测定（MAT）作为新兴全热原检测技术，利用人源单核细胞（如 THP-1 细胞）释放 IL-6、TNF-α 等细胞因子的特性，可同时识别内毒素与非内毒素热原，契合疫苗、基因治疗产品等对风险控制的需求。三种方法协同应用，从原料入厂到成品放行构建全流程热原防控网络，既保证对内毒素的准确监控，又避免非内毒素热原的遗漏风险。

传统细菌内毒素检查法（BET）只能检测革兰氏阴性菌的 LPS，无法识别革兰氏阳性菌 LTA、真菌酵母多糖、病毒鞭毛蛋白等非内毒素热原，存在漏检风险；同时，部分样品（如脂质体、表面活性剂制剂）会因内毒素吸附导致低内毒素回收（LER），BET法难以准确定量。MAT 法通过单核细胞表面的多种 TLR 受体（TLR1-TLR10），可识别不同类型热原：TLR4 识别 LPS、TLR2/TLR6 识别 LTA 与酵母多糖、TLR5 识别鞭毛蛋白、TLR3 识别病毒 dsRNA 等，实现 “全热原覆盖”。湖州申科生物热原检测试剂盒（MAT法）的验证数据显示，其对不同浓度非内毒素热原均有响应：如 0.1-100μg/mL 鞭毛蛋白可检测到 0.005-0.035EU/mL热原活性，0.1-10μg/mL LTA 对应 0.1-0.7EU/mL 热原活性，1-100μg/mL 雷西莫特（TLR7/8 配体）对应 0.5-3.0EU/mL 热原活性。此外，MAT法检测的是热原的生物活性（而非单纯 LPS 含量），可避免 LER 导致的假阴性，为CGT等高风险产品提供更有保障的热原检测方案。

中国药典对 MAT 法热原检测要求 4 复孔，未明确 CV 限值，需结合细胞实验特性合理解读与操作。药典不设 CV 限值的主要原因是：MAT 法基于细胞反应，细胞活性易受环境微小变化（如温度、pH）影响，存在天然不稳定性，过严的 CV 要求可能脱离实际；但实验室可通过积累多批次数据，制定内部 CV 控制范围（如定量上下限 CV≤30%、25%），确保检测重复性。关于 3 复孔的适用性：若长期数据显示 CV 控制良好（如连续 10 批次 CV<20%），且样品为中间过程检测（非 QC 放行），可尝试 3 复孔，但需同步设置加标对照，验证结果可靠性；若为 QC 放行检测，仍建议按 4 复孔操作，符合药典下限要求。对于异常点处理，可采用狄克逊准则（Q 检验）等统计学方法 —— 如某复孔 IL-6 检测值偏离平均值 30% 以上，且无明显操作误差（如加样错误），可判定为异常点并剔除，但需在原始记录中详细说明原因，确保数据可追溯，避免随意剔除导致结果失真。

MAT法热原检测中，样品与细胞共培养时长需严格控制，以保障炎症因子分泌量稳定。说明书要求共培养 24 小时，虽未明确允差，但实验验证显示，±30 分钟的允差对结果无明显影响 —— 细胞因子（如 IL-6）分泌具有时间依赖性，24 小时左右达到分泌平台期，半小时差异不会导致分泌量大幅波动。若实验室对结果稳定性要求极高（如 QC 放行检测），建议严格按 24 小时操作，避免因时长差异引入误差；若为预实验（如样品稀释倍数摸索），±30 分钟允差可接受，但需在记录中注明实际培养时长。需注意的是，共培养时长不可超过 26 小时或短于 22 小时：过长会导致细胞活性下降（炎症因子分泌减少），过短则未达分泌平台期（检测信号偏低），均可能导致热原浓度低估。此外，培养环境需保持稳定（37℃、5% CO₂），温度波动会影响细胞代谢，间接导致共培养时长的实际效果偏离，因此需定期校准培养箱温度，确保环境条件一致。