PBMC（外周血单个核细胞）的复杂制备流程严重制约热原检测效率。首先，血源获取受献血者数量、时间及采集血液政策限制，无法按需即时获取；其次，需严格执行 EP2.6.30 规定的标志物检测，增加前期准备时间；再进行采集血液、分离单核细胞、冻存等环节需全程无菌操作，步骤繁琐且易引入污染风险。相比之下，单核细胞系可工业化培养，制备流程简单可控，能快速提供合格细胞，避免因 PBMC 制备延误热原检测进度，更适配批量样品的高效质控。MAT 法检测革兰氏阳性菌注射剂，需排查非内毒素热原（如 LTA），避免只测内毒素漏检。北京非动物源热原检测
相较于传统家兔法，热原检测MAT法在动物福利、检测性能、适用范围等方面具有明显优势。从动物福利看，MAT法使用分离培养的单核细胞系（如湖州申科 HL-60 细胞系），无需动物，完全符合 “减少、替代、优化” 的 3R 原则，规避家兔法的伦理争议与饲养成本。检测性能上，家兔法只能定性且灵敏度低（检测限≥5EU/kg），结果受动物个体差异、环境温度影响大；MAT 法可定量检测，标曲线性范围 0.0125-1.0EU/mL，检测限（LOD）达 0.0125EU/mL，批间 CV≤25%，重复性更优。适用范围方面，家兔法不适用于放射性质药物、基因疗法制剂等可能影响动物体温的产品；MAT法适配疫苗、血制品、抗体药、化药等几乎所有类型样品，且支持高通量检测，单块 96 孔板可同时分析多个样品，检测时间从家兔法的3-7天缩短至1.5天，大幅提升效率。
生物制品热原检测体系PBMC（外周血单个核细胞）用于 MAT 检测时供体差异大，IL-6 释放波动明显，标准化难度高于单核细胞系。
热原是指微量即可引发恒温动物体温异常升高的物质，分为内源性（如细胞因子）与外源性两类，外源性热原又涵盖微生物来源（革兰氏阴性菌脂多糖 LPS、革兰氏阳性菌脂磷壁酸 LTA、病毒、真菌等）与非微生物来源（灰尘、橡胶降解产物等）。传统细菌内毒素检查法（BET）只能检测革兰氏阴性菌的 LPS，无法覆盖非内毒素热原，而单核细胞活化试验（MAT）可弥补这一缺陷。其原理是：热原通过活化单核细胞表面的 Toll 样受体（TLR，如 TLR4 识别 LPS、TLR2/TLR6 识别 LTA），启动先天免疫反应，促使细胞释放 IL-6、TNF-α 等促炎细胞因子；随后采用 ELISA 法检测 IL-6 浓度，结合 LPS 标准曲线推算样品中总热原含量，实现对内毒素与非内毒素热原的同步检测，契合《中国药典》9301 指导原则中 全场景防控热原风险”的要求。
MAT法热原检测中，标曲信号值偏低或线性不佳是常见问题，需按细胞、标准品、ELISA 检测三环节排查解决。细胞相关问题中，细胞复苏后若未充分混匀导致结团，种板后细胞分布不均，会使局部信号弱，需振荡细胞悬液后再种板；细胞活性差或处理时间超半小时，会降低炎症因子分泌，需严格按说明书操作并缩短处理时间；孵育未达 37℃、5% CO₂条件，细胞活化不足，需确保培养箱参数稳定；细胞悬液若接触外源热原，会引发非特异性反应，操作时需远离热原污染源。标准品问题方面，配制稀释错误会直接导致浓度不准，需核对稀释步骤；振荡时间不足（未按说明书要求）会使内毒素分散不均，需确保振荡充分且 4 小时内使用；标准品降解会导致效价下降，需按推荐条件保存（如 - 20℃冷冻）。ELISA 检测环节，孵育时间短或振荡速度慢会影响抗体结合，可适当延长孵育或提高振荡速度；TMB 显色不足（<3 分钟）会导致信号低，需显色 3-10 分钟，待高浓度点 OD600 达 1.0 时加终止液。
一旦热原涌入人体循环系统，致热因子直抵下丘脑体温中枢，导致调定点上移、产热升散热降，体温随之飙升。
PBMC（外周血单个核细胞）用于 MAT 热原检测时，存在异质性与血源供应两大关键问题。从异质性来看，PBMC 含 12% 单核细胞与 88% 淋巴细胞，且来自不同供体，细胞组成、功能状态及热原反应存在明显差异，导致热原刺激后 IL-6 释放量波动大，标准化难度高。血源供应方面，除受献血者数量、时间及采集血液政策限制外，EP2.6.30 还要求严格检测乙肝、丙肝等标志物，且采集血液、处理、试剂制备全程需无菌操作，流程环节多、复杂度高，远不及单核细胞系制备简便，易影响热原检测的时效性与稳定性。家兔法是热原检测 “金标准”，但操作繁琐、耗时且需动物设施，存在明显局限。北京非动物源热原检测
中国药典9301已将MAT列为热原检测的补充方法，美国药典鼓励企业采用经过验证的MAT替代家兔法。北京非动物源热原检测
MAT 法热原检测中，细胞传代的代次控制是保障检测稳定性的关键，需结合细胞特性与文献数据制定标准。参考行业文献，单核细胞系（如 HL-60、THP1）的使用代次通常不超过 20 代，代次过高会导致细胞生物学特性改变：一是 TLR 受体表达下降，如 TLR4 表达量在 20 代后下降 40%，导致内毒素检测灵敏度降低；二是细胞倍增时间延长，从 24 小时延长至 36 小时，影响共培养时长的准确性；三是炎症因子分泌减少，IL-6 分泌量在 20 代后下降 35%，导致热原浓度低估。申科对配套的 HL-60 细胞系进行代次稳定性验证，结果显示：1-15 代细胞的热原响应性一致（加标回收率 85%-125%），16-20 代回收率波动至 70%-130%，21 代后回收率 < 70%，因此建议控制在 1-15 代使用。实验室需建立细胞代次记录制度，每传代 1 次记录代次，达到 15 代后及时更换新批次细胞，并验证新批次细胞与旧批次的一致性（如检测同一样品，结果偏差≤20%），确保不同代次细胞的检测结果稳定。
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