如果能确保用同样的超滤管对其它蛋白成功操作的话，那么有可能是这个目的蛋白的原因。有时蛋白会因其本身的一些特性（构象差异）而影响浓缩效果，建议选用上一分子量级别的超滤管（如原本选用30k，此时可以选择10k）。 2）如果目的样本也不在滤过液中，那么： a）蛋白样本起始浓度是否大于25ug/mL？ b）用来确定样本浓度的方法是什么？是否可信？ c）目的蛋白是不是沉淀了？如果是的，具体解决方法请参考上面的关于蛋白沉淀问题的解释。超滤浓缩管的主要优势是什么。长宁区浓缩管订购
膜的吸附损失 对于浓度很低及珍贵的样品，除了考虑截留效率和操作方便外，额外 要关注的是采用的超滤膜及设备对目标蛋白的潜在非特异性吸附损 失。不同膜材质对生物分子吸附程度不同，默克密理博的 Ultracel® 再 生纤维素膜在各类膜中对生物分子吸附**小，是 Amicon® Ultra 超滤管 等超滤产品成为优先的**技术关键之一。滤膜和装置表面对溶质的 吸附对样品收率会产生直接影响，所以如果希望尽可能提高得率，就 应该考虑采用较小的设备和膜面积。小量的、较为稀释的样品应该选 用膜面积小的装置，同时保证一定的流速。默克密理博设计了一系列 离心式或搅拌式装置，配合不同的膜面积、不同的截留分子量的切向 流系统，支持您获得理想的处理效果。静安区超滤浓缩管批发超滤浓缩管的好处都有很多。
外泌体的精制磁珠法富集精制外泌体：300μg样品（相当于300μg总蛋白）用含有5μg anti-CD63抗体的溶液稀释，与protein A/G磁珠共孵育1hr，漂洗后用0.2M glycine洗脱。如果要先将抗体偶联在磁珠上（以避免抗体洗脱下来对外泌体的干扰），请参考默克磁珠操作说明书。（Protocol C - Antibody Crosslinking Using Bis(sulfosuccinimidyl) suberate (BS3)）。推荐使用试剂目录号信息：cat# CBL553t 和cat# OP171以及LSKMAGAG02。 默克已经建立了基于“微滤+超滤”的外泌体制备操作标准，相较于需要昂贵的设备及繁琐操作的超速密度梯度离心，用实验室常见的工具解决外泌体制备的高大上问题，真是惠而不费，不亦乐乎？
这是一种用一步温和的离心完成渗滤而很大程度保持蛋白活性的好方法。 为了与下游应用兼容，常常需要用透析或渗滤方法对蛋白样品进行缓冲液置换。传统透析方法需要时间很长，多步透析容易造成样品丢失、损耗和失活，而且***还需要一步浓缩。新产品 Amicon® Pro 带来了突破性的革新，需一步温和的渗滤操作即可达到同时对样品进行换液和浓缩的目的。 Amicon® Pro建立小量蛋白样品纯化-换液/ 脱盐-浓缩流程 新标准 操作步骤的优化与简化往往带来更好的结果，数据的稳定性、可比性和高通量化随之得以改 善，默克密理博新上市的Amicon® Pro纯化超滤管创造性地将纯化、换液、脱盐和浓缩操作融为一体，减少样品转移损失和人为操作的繁琐和误差，使蛋白样品的处理更加标准化，数据结果便于评估和比较。宝贵的小量样本从此有了比较好的操作工具。对于不同的需求我们选择不同的超滤浓缩管系列。
脱盐/缓冲液置换并浓缩 5次低速离心，总耗时~35分钟 1. 在上样池中加入0.5 mL TBS-T预湿Amicon® Pro。1,000×g离心1 min。 2. 优化选做：加入1.5 mL用于置换的缓冲液，1,000×g离心1 min。 3. 上样池下端接上Amicon® Ultra 0.5 mL超滤管（有5种截留分子量规格可选）。 4. 加入1.5 mL样品，4,000×g离心15 min进行浓缩。 5. 加入1.5 mL需要置换的缓冲液，4,000×g离心15 min，换液的同时进行浓缩。 6. 倒转Amicon® Ultra 0.5 mL超滤管，1,000×g离心回收处理好的蛋白。 * 进行较大体积操作时，可以适当延长离心时间，也可参考Amicon® Pro完整操作说明书 查看详细信息。您了解超滤浓缩管的优势吗？嘉定区超滤浓缩管
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截留 截留有时也称为排阻。水合程度、离子和空间位置效应会导致分子量相近 的分子表现非常不同的截留状态。许多生物大分子在不同的 pH 或离子强 度改变的情况下倾向于聚集或改变构象，因此其有效大小可能比 “天然” 分子大恨多，从而导致排阻增加。比如，有些蛋白质在某些缓冲液条件下 会发生多聚化，而另一些则发生解聚（如血红素蛋白）成亚基。这使选择 合适截留分子量的膜变得复杂。以默克密理博的经验，我们通常推荐选择 为目的分子大小一半的膜作为尝试的优先，再根据实际情况加以调整。长宁区浓缩管订购
