PCR实验技术中的巢氏PCR（NestedPCR）介绍：巢氏PCR需要两到三对引物，一般采用较为套引物扩增15-30个循环，再用扩增DNA的片段内设定的第二套引物扩增15-30个循环，这样可使待扩增序列得到高效扩增，而次级结构却很少扩增。套式引物PCR减少了引物非特异性退火，从而增加了特异性扩增，提高了扩增效率。若将套失PCR的内外引物稍加改变，延长外引物长度（25-30bp），同时缩短内引物长度（15-17bp），使外引物先在高退火温度下复性，做双温扩增，然后改换至三温循环，使内引物在外引物扩增的基础上，在低退火温度复性，直到扩增完成，这样就可以使两套引物一次同时加入。荧光定量pcr的原理和步骤是什么？贵州pcr实验室
PCR实验技术中的快速PCR（FastPCR）介绍：在快速PCR中，通过缩减PCR步骤所需的时间来完成更快的扩增，而不影响扩增产量和效率。快速循环条件尤其适用于均有高扩增能力的DNA聚合酶，这种聚合酶在每次结合中可引入更多的核苷酸。高扩增能力的聚合酶可保持高扩增效率，而PCR延伸时间是Taq聚合酶（低扩增能力）延伸时间的1/2到1/3（图4）。通过将引物退火和延伸（如果温度只相差几度）合并成一步，PCR反应时间可进一步缩短。这个方案也被称为两步PCR方案。黑龙江高效pcr实验室英瀚斯生物分子生物学平台，配备专业定量pcr仪。
PCR反应五要素：参加PCR反应的物质主要有五种即：引物(PCR引物为DNA的片段，细胞内DNA复制的引物为一段RNA链）、酶、dNTP、模板和缓冲液（其中需要Mg2+）。引物有多种设计方法，由PCR在实验中的目的决定，但基本原则相同。PCR所用的酶主要有两种来源：Taq和Pfu，分别来自两种不同的噬热菌。其中Taq扩增效率高但易发生错配。Pfu扩增效率弱但有纠错功能。所以实际使用时根据需要必须做不同的选择。模板即扩增用的DNA，可以是任何来源，但有两个原则，1号纯度必须较高，第二浓度不能太高以免抑制。缓冲液的成分较为复杂，除水外一般包括四个有效成分：缓冲体系，一般使用HEPES或MOPS缓冲体系；一价阳离子，一般采用钾离子，但在特殊情况下也可使用铵根离子；二价阳离子，即镁离子，根据反应体系确定，除特殊情况外不需调整；辅助成分，常见的有DMSO、甘油等，主要用来保持酶的活性和帮助DNA解除缠绕结构。
PCR实验室设计的中心问题是如何避免污染。在实际工作中，常见的有以下几种污染类型：扩增产物的污染；天然基因组DNA的污染；试剂的污染以及标本间的污染。由于一旦发生污染，实验就必须停止，直到找到污染源为止，而且实验结果必须作废，需重新进行实验。所以发生污染后再围绕实验室来寻找污染源不但耗时而且繁琐，浪费人力物力。因此要避免污染，首先应是预防，而不是排除。PCR扩增检验实验室原则上分为四个单独的工作区域：试剂贮存和准备区、标本制备区、扩增反应混合物配制和扩增区、扩增产物分析区。为避免交叉污染，进入各个工作区域必须严格遵循单一方向进行，即只能从试剂贮存和准备区→标本制备区→扩增反应混合物配制和扩增区→扩增产物分析区。 各实验区之间的试剂及样品传递应通过传递窗进行。pcr检测实验数据如何分析？
PCR出现非特异性扩增带的原因分析：PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致，或大或小，或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。非特异性条带的出现，其原因：一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低，及PCR循环次数过多有关。其次，是酶的质和量，往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现，酶的量过多有时也会出现非特异性扩增。其对策有：①必要时，重新设计引物。②减低酶的量或调换另一来源的酶。③降低引物量，适当增加模板量，减少循环次数。④适当提高退火温度或采用二温度点法(93℃变性，65℃左右退火与延伸，也叫两步法)。pcr检测知识要点总结汇总。海南细胞pcr公司
简述荧光定量pcr的基本原理。贵州pcr实验室
PCR样本可分2种，DNA样本和RNA样本。一，DNA样本：已经提取好的DNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，需全血，加入抗凝剂，抗凝管4度保存；组织样本，需冻存管或干净灭菌的离心管装，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。二，RNA样本：提取好的RNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，全血，加入抗凝剂，4度冰箱保存；组织样本，冻存管或干净灭菌离心管，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。长时间保存，可加Trizol，其中血液用TrizolLS组织和细胞沉淀用Trizol。贵州pcr实验室
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