1983年,外泌体初次于绵羊网织红细胞中被发现,1987年Johnstone将其命名为“exosome”。多种细胞在正常及病理状态下均可分泌外泌体。其主要来源于细胞内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体,经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中。所有培养的细胞类型均可分泌外泌体,且外泌体天然存在于体液中,包括血液、唾液、尿液、脑脊液和乳汁中。有关他们分泌和摄取及其组成、“运载物”和相应功能的精确分子机制刚刚开始研究。外泌体目前被视为特异性分泌的膜泡,参与细胞间通讯,对外泌体的研究兴趣日益增长,无论是研究其功能还是了解如何将其用于微创诊断的开发。如何高效地提取外泌体是实现这项新兴液体活检技术临床常规化应用的关键。外泌体提取:根据外泌体的大小,从蛋白质和其他大分子中分离外泌体。郑州外泌体提取试剂厂家推荐

1996年GRaposo等发现类似于B淋巴细胞的免疫细胞也会分泌抗原呈递外泌体(antigenpresentingvesicle),所分泌的外泌体可以直接刺激效应CD4+细胞的抗一些病症反应。2007年HValadi等进一步发现细胞之间可以通过外泌体中RNA交换遗传物质。随着有关外泌体研究越来越多,研究者发现它普遍参与了机体免疫应答、抗原呈递、细胞分化、一些病症生长于侵袭等各种生物过程中。目前的主流观点认为,外泌体的产生过程为:细胞膜内陷,形成内体(endosome),再形成多泡体(multivesicularbodies,MVB),较后分泌到胞外成为外泌体。外泌体中携带有母细胞的多种蛋白质、脂类、DNA和RNA等重要信息。外泌体较早见于1981年,EGTrams等在体外培养的绵羊红细胞上清液中发现了有膜结构的小囊泡,并命名为exosome。对于外泌体的作用,当时推测为细胞排泄废物的一种方式。昆明正规外泌体提取试剂厂家直销外泌体提取:低速离心去除细胞和凋亡碎片。

在无菌条件下提取人体体液,并用PBS缓冲液进行稀释,然后通过离心筛选初步去除体液中的细胞成分和细胞碎片,制成体液样本备用;体液样本纯化:通过过滤膜对上述体液样本进行过滤,进一步去除体液中的细胞残片及其他杂质,静置10~15分钟,留取沉淀物备用;外泌体提取:将上述沉淀物用PBS缓冲液进行悬浮,使外泌体悬浮于液体上层,然后用无菌针管吸取上层含有外泌体的液体,置于80℃储存备用。此提取方法条件复杂,成本高,专利申请利用静置不太可能把外泌体沉降下来;根据外泌体表面的特异生物化学特性通过提取试剂的特异配方把外泌体从水相中沉降下来。不同细胞分泌的外泌体具有不用的组成成分和功能,可作为疾病诊断的生物标志物。
专利申请利用分离培养人尿液来源细胞并收集培养基来进行体外培养,直接把外泌体从尿液中沉降下来,无须分离培养人尿液来源细胞并收集培养基。人尿液来源细胞的外泌体的获取方法,是首先分离培养人尿液来源细胞并收集培养基,将人尿液来源细胞的培养基通过0.22微米滤膜过滤,以去除大的细胞残片以及其它杂质;然后离心除去细胞器,留取上清;再使用可截留100KD分子量的膜,通过离心截留上清中的外泌体,截留完成后,使用PBS对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。外泌体提取:密度梯度离心。

来源于不同的组织的外泌体不仅具有其特异性蛋白分子,而且还包含其行使功能的关键分子。有关外泌体分泌和摄取及其组成、“运载物”和相应功能的精确分子机制近些年刚刚开始受到关注,与外泌体相关的被pubmed收录的文章数量和国自然基金项目中标数量逐年增长,表明国内外对外泌体的研究兴趣日益增长。细胞外囊泡是蛋白质、mRNA、miRNA和脂质运输来完成细胞间通讯通路的重要媒介,根据它们的大小和发生分为三类,包括外泌体、微泡和凋亡小体。其中,外泌体是直径大约为40-100nm的包装囊泡,由多种细胞分泌,内含有特定的蛋白质、脂质、细胞因子或遗传物质。可以使用NanoSight®或电子显微镜分析纯化的外泌体,以评估近似外泌体大小范围和浓度。徐州外泌体提取试剂报价
外泌体提取:通过色谱分离的外泌体不受剪切力的影响,这可能会改变囊泡的结构。郑州外泌体提取试剂厂家推荐
外泌体的提取主要包括以下几种方式。一是超速离心法,这是目前外泌体提取较常用的方法。此种方法得到的外泌体量多,但是纯度不足,电镜鉴定时发现外泌体聚集成块,由于微泡和外泌体没有非常统一的鉴定标准,也有一些研究认为此种方法得到的是微泡不是外泌体。二是过滤离心,这种操作简单、省时,不影响外泌体的生物活性,但同样存在纯度不足的问题。三是密度梯度离心法,用此种方法分离到的外泌体纯度高,但是前期准备工作繁杂,耗时,量少。外泌体检测作为一种新型的液体活检热点技术已被许多临床科研机构普遍地应用于一些病症和疾病的无创诊断。郑州外泌体提取试剂厂家推荐
将浓缩液加至20mmol/LTris/30%蔗糖/45%蔗糖(pH7.4)的密度梯度液上行4℃超速离心100000×g(水平转子SW-41)8h,吸取位于蔗糖之上的颜色明显较深条带的液体约5mL,以10倍PBS稀释混匀后再次用100-ku超滤离心管(Millipore)浓缩至5mL,将浓缩液重新以10倍PBS稀释后4℃超速离心100000×g(角转子TYPE50.2)4h,收集离心管底部约1mL液体及极微量沉淀(来自2×107个细胞)以20mLPBS重悬即为胞外体,用0.22μm过滤膜除菌后冻存于-80℃备用。(该步骤参考文献“肿瘤细胞来源胞外体的分离鉴定与功能检测”)优点是:分离得到的外泌体...