外泌体表面有其特异性标记物(如CD63、CD9蛋白),用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点,但是效率低,外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响,不利于下游实验,难以普遍普及。聚乙二醇(PEG)可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀,早先应用于从血清等样本中收集细菌,现在也被用来沉淀外泌体,其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题:比如纯度和回收率低,杂蛋白较多(假阳性),颗粒大小不均一,产生难以去除的聚合物,机械力或者吐温-20等化学添加物将会破坏外泌体等,因此发表文章时易受质疑。将沉淀物用PBS缓冲液进行悬浮,使外泌体悬浮于液体上层。长沙外泌体提取试剂

外泌体来源及内含物。几乎所有类型的细胞都可以分泌外泌体,同时外泌体也普遍存在于体液中,包括血液、眼泪、尿液、唾液、乳汁、腹水等。目前研究发现外泌体中富含核酸(microRNA、lncRNA、circRNA、mRNA、tRNA等)、蛋白、胆固醇等。外泌体的表面marker主要有CD63、CD81、CD9、TSG101、HSP27等。外泌体鉴定。目前对于外泌体的鉴定主要有四种方法:透射电子显微镜(TEM)、Nanosight、WesternBlot、流式细胞术。近年来,随着外泌体研究的不断深入,它的应用已经涉及一些病症治病领域、医学基础和免疫领域、寄生虫领域;临床研究上已涉及心血管系统、内分泌代谢系统等。贵阳外泌体提取试剂平均价格首先在无菌条件下提取人体体液,并用PBS缓冲液进行稀释。

研究表明被特定部位的细胞获取的一些病症外泌体可为一些病症的转移准备转移前微环境。用肺转倾向的一些病症细胞来源的外泌体处理小鼠后可使骨转倾向的一些病症细胞重新定向。外泌体的蛋白质组学分析发现不同部位倾向性的一些病症细胞来源的外泌体具有不同的整合素(integrin)表达谱,整合素α6β4和α6β1与肺转有关,而整合素αvβ5与肝转有关。敲低整合素α6β4和αvβ5可减少外泌体被靶部位细胞获取,进而分别降低了肺和肝的转移。进一步研究发现外泌体整合素被细胞获取后启动了Src的磷酸化和促炎的S100基因的表达。较后通过临床数据分析显示外泌体整合素可作为预测一些病症转移的部位倾向性的诊断指标。
外泌体的组成较为复杂,其内含有多种生物大分子,如:核酸(双链DNA和各种RNA亚型)、蛋白质和脂质。这些分子被外泌体携带进入血液循环,而后被靶细胞吸收,从而调节靶细胞基因表达和细胞功能。此外,外泌体相关的miRNA作为短单链和非编码RNA分子,调节致病基因或抑病基因的表达,参与细胞分化、细胞凋亡及细胞信号的传导。有研究表明,外泌体能影响一些病症微环境的形成、增强一些病症细胞的侵袭和转移能力、介导一些病症免疫压制及参与一些病症放化疗抵抗进而促进一些病症的发生的发展。静置10~15分钟,留取沉淀物备用。

有的外泌体分离方法需要高速离心,需要使用大型机器,耗费近24小时的时间才能获得,非常不便。而高离心力也可能破坏囊泡。降低样品的质量。这项研究有望解决这一难题。在论文中,研究人员们提供了一种通过微流体和声学的独特组合从体液样品中捕获外泌体的新颖方法。他们开发的原始声学分选装置由两个倾斜的声学换能器和一个微流体通道组成,当这些传感器产生的声波相互碰撞时,形成产生一系列压力节点的驻波。每当细胞或颗粒流过通道并遇到一个节点时,压力会将细胞引导离开中心一点点。细胞移动的距离取决于大小和其他属性(如可压缩性),这样,当到达通道末尾时,不同大小和性质的细胞就能够被分离开来。这种方法分离得到的外泌体,基本上不改变其生物或物理特征,为开发评估人类健康以及疾病诊断和进展提供了有吸引力的新方法。无法实现临床的常规化应用。贵阳外泌体提取试剂平均价格
磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点。长沙外泌体提取试剂
外泌体相关miRNA与肺病的诊断:进一步研究发现,另外6种外泌体(miR-151a-5p、-30a-3p、-200b-5p、-629、-100、-154-3p)可用于肺病的诊断,其AUC为0.76。这些miRNAs具有NSCLC早期诊断的高度敏感性,有望成为NSCLC早期诊断筛查的生物标志物。在临床应用方面,目前ExosomeDiagnostics公司研发的基于血浆外泌体的ALK试剂盒已于2016年初被美国FDA批准用于临床。这是世界上个以血液样本分析外泌体RNA的临床液体活检。这项方法可以准确、实时地检测NSCLC患者的EML4-ALK突变,通过比较NSCLC患者组织ALK水平和相应的血浆样本发现该项检测可以达到88%的诊断灵敏度和100%的诊断特异性。而此前,对于EML4-ALK的检测是基于组织活检的FISH或IHC,而且,FISH缺乏灵敏性,误诊率也较高。长沙外泌体提取试剂
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1983年,外泌体初次于绵羊网织红细胞中被发现,1987年Johnstone将其命名为“exosome”。多种细胞在正常及病理状态下均可分泌外泌体。其主要来源于细胞内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体,经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中。所有培养的细胞类型均可分泌外泌体,且外泌体天然存在于体液中,包括血液、唾液、尿液、脑脊液和乳汁中。有关他们分泌和摄取及其组成、“运载物”和相应功能的精确分子机制刚刚开始研究。外泌体目前被视为特异性分泌的膜泡,参与细胞间通讯,对外泌体的研究兴趣日益增长,无论是研究其功能还是了解如何将其用于微创诊断的开发。如何高效地提取外泌体是实现这项新兴液体活检技术临床常规...