外泌体的提取、分离方法:开发高效、快速、稳定,并且保持外泌体结构和生物功能完整性的方法,是目前外泌体应用于临床的基础和前提。从细胞上清和体液中提取分离外泌体的方法很多,但是外泌体的纯度和产量却和分离方法息息相关。通常分离步骤少、产率高,但是纯度会受到影响。鉴于每种分离方法都有其优缺点,实验可以根据样本来源、下游实验目的等,选择合适的外泌体分离方法。2015年,国际囊泡组织(InternationSocietyforExtracelluarVesicles,ISEV)指出,简单依靠一种分离方法得到的外泌体的纯度和产量都难满足实验的需求。因此,推荐联合使用各种方法,从而得到高纯度和高产量的外泌体。静置10~15分钟,留取沉淀物备用。贵阳正规外泌体提取试剂厂家

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外泌体的提取分离:1、超滤离心。由于外泌体是一个大小约几十纳米的囊状小体,大于一般蛋白质,利用不同截留相对分子质量(MWCO)的超滤膜对样品进行选择性分离,便可获得外泌体。超滤离心法简单高效,且不影响外泌体的生物活性,是提取细胞外泌体的一种新方法。2、磁珠免疫法。外泌体表面有其特异性标记物(如CD63、CD9蛋白),用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点,但是效率低,外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响,不利于下游实验,难以普遍普及。
外泌体相关miRNA与肺病的诊断:miRNAs是一类含有20~25个核苷酸的非编码小RNA,能够通过下调或压制靶mRNAs来调节转录水平上的基因表达,目前非编码RNA被普遍发现存在于NSCLC患者外泌体中,参与一些病症的形成和演化过程。单个miRNA可能通过压制性复合物与多个mRNA结合,从而阻滞整个生物通路。因此,外泌体的miRNA具有成为NSCLC标志物的优势。Chen等在152例肺病患者的研究中初次报道了循环游离miRNA的表达,与75例健康者相比,发现了两种高表达的miRNA(miR-25和miR-223)。Rabinonowits等对27例肺病患者和9例健康人的血浆外泌体中12个miRNA的表达进行了评估,结果显示,12个一些病症相关的miRNA*在肺病患者中过度表达。Cazzoli等收集了30个血浆样本,发现4种外泌体miRNA(miR-378a、-379a、-139-5p、-200b-5p)在肺病患者血清中明显升高,用于筛查患者与健康人ROC曲线下面积(AUC)为0.908。离心除去细胞器,留取上清。外泌体的提取、分离方法:聚合物沉淀法。

外泌体研究的主要应用:外泌体的功能取决于其所来源的细胞类型,其可参与到机体免疫应答、抗原提呈、细胞迁移、细胞分化、一些病症侵袭等方方面面。有研究表明一些病症来源的外泌体参与到一些病症细胞与基底细胞的遗传信息的交换,从而导致大量新生血管的生成,促进了一些病症的生长与侵袭。一些病症。一些病症转移。来自白血病干细胞的外泌体促进急性骨髓性白血病(AML)细胞的增殖、迁移和压制细胞凋亡。治病靶标。利用外泌体递送小干扰RNA来沉默KRASG12D,从而特异性高效靶向至胰腺病细胞,以明显降低RAS活化、病细胞增殖和转移过程。免疫。β细胞将含有蛋白质和miRNA的外泌体释放到细胞外,并可转移到其他代谢部位或免疫内皮细胞,有利于维持葡萄糖体内平衡或造成胰岛素抵抗。心血管。外泌体介导miR-155从平滑肌细胞转移到内皮细胞导致了内皮细胞的损伤促进动脉硬化。分子标记。疾病诊断。在酒精性肝病、NASH、菌类性肝炎、药物性肝损伤和肝细胞病中发现循环EVs的水平上升。预后标志。由于外泌体的特殊结构和功能,使得它具有潜在的应用价值。南京外泌体提取试剂
这些试剂盒不需要特殊设备,随着产品不断更新换代,提取效率和纯化效果逐渐提高。贵阳正规外泌体提取试剂厂家
外泌体的提取方法:1.超速离心法(差速离心)。超离法是较常用的外泌体纯化手段,采用低速离心、高速离心交替进行,可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单,获得的囊泡数量较多而广受欢迎,但过程比较费时,且回收率不稳定(可能与转子类型有关),纯度也受到质疑;此外,重复离心操作还有可能对囊泡造成损害,从而降低其质量。2.密度梯度离心。在超速离心力作用下,使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层,是一种区带分离法。通过密度梯度离心,样品中的外泌体将在1.13-1.19g/ml的密度范围富集。此法获得的外泌体纯度较高,但步骤繁琐,耗时,对离心时间极为敏感。贵阳正规外泌体提取试剂厂家
将浓缩液加至20mmol/LTris/30%蔗糖/45%蔗糖(pH7.4)的密度梯度液上行4℃超速离心100000×g(水平转子SW-41)8h,吸取位于蔗糖之上的颜色明显较深条带的液体约5mL,以10倍PBS稀释混匀后再次用100-ku超滤离心管(Millipore)浓缩至5mL,将浓缩液重新以10倍PBS稀释后4℃超速离心100000×g(角转子TYPE50.2)4h,收集离心管底部约1mL液体及极微量沉淀(来自2×107个细胞)以20mLPBS重悬即为胞外体,用0.22μm过滤膜除菌后冻存于-80℃备用。(该步骤参考文献“肿瘤细胞来源胞外体的分离鉴定与功能检测”)优点是:分离得到的外泌体...