Recombinant Human LGMN Protein

PreScissionProtease（PSP）在去除融合蛋白标签时，对目的蛋白的纯度和活性的影响通常是积极的，具体表现在以下几个方面：1.**小化污染**：由于PSP具有高度的特异性，它在特定的肽键处切割，从而减少了非特异性切割可能导致的蛋白质片段，这有助于保持目的蛋白的纯度。2.**减少蛋白质修饰**：PSP的特异性切割有助于避免在切割过程中对目的蛋白引入额外的修饰，如磷酸化或糖基化，这些修饰可能会影响蛋白质的活性和稳定性。3.**保持活性**：如果融合蛋白标签的设计和切割位点选择得当，PSP切割后的目的蛋白通常能够保持其原有的生物活性。切割位点通常位于标签和目的蛋白之间，这样切割后不会在目的蛋白上留下额外的氨基酸，从而减少了对蛋白质结构和功能的影响。4.**提高纯度**：PSP切割后，可以通过亲和层析等方法将标签、PSP以及未切割的融合蛋白分离，从而获得高纯度的目的蛋白。5.**便于后续分析**：去除标签后的目的蛋白更易于进行后续的质谱分析、晶体学研究或其他生物化学分析，因为去除了可能干扰分析的标签部分。6.**稳定性**：在某些情况下，融合蛋白的标签可能有助于稳定目的蛋白的构象，因此在去除标签后，需要适当处理以维持目的蛋白的稳定性。FnCas12a包含约1300个氨基酸，含有RuvC-like结构域，同时具有DNA和RNA内切酶的活性。Recombinant Human LGMN Protein,His Tag

确保重组EGFP（增强型绿色荧光蛋白）在实验中的稳定性和活性，可以采取以下措施：1.**适当的储存条件**：重组EGFP通常以冻干粉形式提供，应在-20°C至-80°C的低温条件下储存，以保持其稳定性。避免反复冻融，因为这可能导致蛋白质结构的破坏和活性的丧失。2.**正确的复溶方法**：在无菌条件下，使用推荐的溶剂（通常是无菌去离子水或适当的缓冲液）复溶EGFP，并避免使用含有蛋白酶或氧化剂的溶液。3.**避免光照**：EGFP对光照敏感，尤其是在紫外和蓝光下。在处理和储存时应避光，使用遮光容器或在低光照条件下操作。4.**使用保护剂**：在某些情况下，添加蛋白稳定剂（如甘油、蔗糖或BSA）可以提高EGFP的稳定性。5.**避免极端pH**：EGFP的活性和稳定性可能受到pH值的影响。在实验中使用接近其等电点pH值的缓冲系统，通常是中性或略偏碱性的条件。6.**控制温度**：避免将EGFP暴露在极端温度下，尤其是在高温条件下，因为这可能导致蛋白质变性。7.**避免物理剪切力**：在操作过程中，避免剧烈搅拌或超声处理，因为这些可能会导致蛋白质结构的破坏。Recombinant Mouse APOA5 Protein,His Tag泛素连接酶E3识别特定的靶蛋白，并促进E2上的泛素转移到靶蛋白的赖氨酸残基上，形成泛素化标记。

通过SDS-PAGE（聚丙烯酰胺凝胶电泳）和Westernblot（西方印迹）可以有效地检测带有His标签的泛素蛋白的纯度和完整性。以下是进行这些检测的步骤：###SDS-PAGE步骤：1.**样品准备**：-将重组泛素蛋白溶解在适当的缓冲液中，通常含有还原剂（如DTT或β-巯基乙醇）以断裂二硫键。-将样品在95-100°C下加热5分钟以变性蛋白质。2.**凝胶准备**：-根据需要的分辨率选择合适的凝胶浓度（例如，12%或15%凝胶用于检测20-100kDa的蛋白质）。3.**上样**：-将变性后的样品加入到凝胶的相应孔中，同时加入分子量标记物作为参照。4.**电泳**：-在恒定电压或恒定电流下进行电泳，直到样品在凝胶中充分分离。5.**染色**：-使用考马斯亮蓝或其他蛋白质染色剂对凝胶进行染色，以可视化蛋白质条带。6.**分析**：-通过比较样品条带与分子量标记物，评估蛋白质的分子量和纯度。###Westernblot步骤：1.**转膜**：-将SDS-PAGE分离的蛋白质从凝胶转移到PVDF或硝酸纤维素膜上。2.**封闭**：-使用封闭液（如5%脱脂奶粉或1%BSA溶液）封闭膜上未被蛋白占据的部分，以减少非特异性结合。3.**一抗孵育**：-使用特异性识别His标签的抗体（一抗）与膜上的蛋白质孵育，通常在4°C过夜。

提高SpCas9蛋白在基因编辑中的特异性和效率是CRISPR-Cas9技术发展的关键。根据新的研究进展，以下是一些提高SpCas9特异性和效率的策略：1.**工程化改造**：通过定向进化和蛋白工程的方法，研究人员可以对SpCas9进行改造，以提高其在细胞中的基因编辑活性。例如，JenniferDoudna团队开发的工程化iGeoCas9，通过在WED结构域引入突变，显著提高了基因编辑效率，比野生型GeoCas9高出100倍以上。2.**优化gRNA设计**：合理设计的gRNA可以提高Cas9的特异性，减少脱靶效应。研究人员通过生物信息学工具和实验验证，筛选出与目标DNA序列互补性更强且特异性更高的gRNA。3.**使用高保真Cas9变体**：研究人员开发了高保真Cas9变体，这些变体在保持编辑活性的同时，降低了脱靶风险。例如，通过突变Cas9蛋白的关键氨基酸残基，可以减少其在非目标位点的切割活性。4.**PAM序列的优化**：通过改变Cas9蛋白的PAM序列识别能力，可以扩大其靶向范围，从而提高编辑效率。例如，开发能够识别非典型PAM序列的Cas9变体。5.**递送系统的优化**：使用核糖核的蛋白（RNP）复合物的形式递送Cas9和gRNA，可以提高Cas9蛋白的稳定性和编辑效率。这种方法避免了mRNA或质粒递送可能引起的免疫反应。Cas12a不仅具有顺式切割活性，还具备独特的反式切割活性，这使得它能够无差别地裂解附近的单链DNA。

SpCas9蛋白（来自化脓性链球菌的Cas9蛋白）在基因编辑中的主要作用是作为核酸酶，能够精确地切割目标DNA序列。以下是SpCas9在基因编辑中的几个关键步骤和作用：1.**识别和结合**：SpCas9蛋白与一个单导向RNA（sgRNA）结合，形成RNP复合物。这个复合物能够识别并结合到基因组中与sgRNA互补的特定DNA序列。2.**PAM序列识别**：SpCas9需要一个称为原间隔子相邻基序（PAM）的特定序列作为识别目标DNA的先决条件。对于SpCas9，这个PAM序列通常是5'-NGG-3'。3.**DNA切割**：一旦RNP复合物与目标DNA结合，SpCas9就会在PAM序列的3个碱基对的上游位置切割DNA双链，产生一个双链断裂（DSB）。4.**引发DNA修复**：DNA双链断裂触发细胞的DNA修复机制，包括同源定向修复（HDR）和非同源末端连接（NHEJ）。研究人员可以利用这些修复机制来插入、删除或替换特定的DNA序列。5.**基因修改**：通过HDR，可以在断裂的DNA两端引入特定的DNA模板，从而实现精确的基因编辑。而NHEJ通常会导致小的插入或缺失（indel），这可以用来产生基因的敲除或敲入。6.**提高编辑效率**：为了提高SpCas9的编辑效率，研究人员可能会使用优化的sgRNA设计、蛋白质工程或嵌合融合蛋白等策略。

研究表明，优化后的Cas12a系统在多种细胞类型中表现出良好的编辑效率。Recombinant Human LGMN Protein,His Tag

PreScissionProtease（PSP）是一种由人鼻病毒14型的3C蛋白酶（humanrhinovirus(HRV)type143Cprotease）和GST组成的融合蛋白。它具有以下特点：1.**特异性识别**：PreScissionProtease能在低温下（4°C）特异识别短肽Leu-Glu-Val-Leu-Phe-Gln-Gly-Pro，并在Gln和Gly氨基酸残基之间进行酶切。2.**依赖结构**：底物的识别和切割不仅依赖于融合蛋白的一级结构，还依赖于融合蛋白的二级和三级结构。3.**分离GST标签**：它可以特异性的将pGEX-6P系列等载体表达出的带有酶底物识别多肽序列融合蛋白的GST标签进行分离。4.**表达宿主**：本品由大肠杆菌中重组表达，并以无菌液体形式提供。5.**物理性质**：分子量约为46kDa，物理外观为无菌无色液体。6.**储存缓冲液**：25mMTris-HCl（pH8.0），150mMNaCl，1mMEDTA，5mMDTT，50%（V/V）Glycerin。7.**酶切缓冲液**：10×酶切缓冲液为500mMTris-HCl（pH7.0），1.5MNaCl，10mMEDTA，10mMDTT。8.**纯度**：经SDS-PAGE及HPLC分析，纯度大于95%。9.**酶活定义**：在5℃条件下反应16小时，能够切割10µg的GST标签的融合蛋白达90%以上所需的酶量定义为一个活性单位。Recombinant Human LGMN Protein,His Tag