重组的化脓性链球菌Cas9蛋白(SpCas9)是一种用于基因组编辑的核酸酶。它是CRISPR-Cas系统的一部分,该系统是一种细菌和古菌的适应性免疫防御机制,能够识别并切割入侵的外源核酸。Cas9蛋白在CRISPR系统中起到关键作用,它能够识别特定的原间隔子相邻基序(PAM),在引导RNA(gRNA)的引导下与目标DNA结合并进行切割。SpCas9蛋白由1053个氨基酸组成,相对较小的体积使其便于在体内递送,因此它在多种生物中都能进行有效的基因组编辑。为了提高SpCas9的表达量和溶解度,研究人员采用了多种策略,例如使用GB1促溶标签和多重启动子策略,这些策略可以显著提高蛋白的产量和活性,同时保持其功能活性不受影响。在基因编辑过程中,SpCas9与gRNA形成稳定的核糖核的蛋白(RNP)复合物,通过gRNA与基因组DNA的序列匹配来识别目标位点,并在距离NGGPAM序列3个碱基以内的位置切割DNA。为了增强SpCas9的基因组编辑效率,研究人员还开发了嵌合融合蛋白,例如与5’至3’核酸外切酶重组J(RecJ)或GFP融合的SpyCas9蛋白,这些嵌合蛋白可以显著提高靶向基因编辑效率,同时保持较低的脱靶效应。

检测重组EGFP(增强型绿色荧光蛋白)的活性和稳定性通常涉及一系列生物化学和分子生物学实验方法。以下是一些常用的检测方法:1.**SDS-PAGE电泳**:-通过SDS-PAGE电泳分析EGFP的纯度和分子量。-观察是否有蛋白质降解或聚合的迹象。2.**WesternBlot**:-使用特异性的GFP抗体进行Westernblot,以检测EGFP蛋白的存在和大小。-可以评估EGFP的表达水平和纯度。3.**荧光光谱分析**:-使用荧光光谱仪测量EGFP的激发和发射光谱。-评估荧光强度和比较大激发/发射波长,以确定其荧光特性。4.**流式细胞仪分析**:-如果EGFP融合蛋白表达在细胞中,可以使用流式细胞仪分析细胞群体的荧光强度。-这有助于评估EGFP的表达水平和细胞内分布。5.**荧光显微镜观察**:-在荧光显微镜下观察EGFP的亚细胞定位和表达模式。-通过时间序列成像,可以评估EGFP在活细胞中的动态变化和稳定性。6.**热稳定性分析**:-通过逐渐升高温度并测量荧光强度的变化,可以评估EGFP的热稳定性。-热稳定性差的EGFP可能会在高温下迅速失去活性。7.**光稳定性测试(光漂白实验)**:-通过持续光照并监测荧光强度的下降(光漂白),可以评估EGFP的光稳定性。Mouse EG-VEGF在这个过程中,E1使用ATP的能量,在自身的活性位点的半胱氨酸残基与泛素C末端的甘氨酸残基形成硫酯键。

SpCas9蛋白(来自化脓性链球菌的Cas9蛋白)在基因编辑中的主要作用是作为核酸酶,能够精确地切割目标DNA序列。以下是SpCas9在基因编辑中的几个关键步骤和作用:1.**识别和结合**:SpCas9蛋白与一个单导向RNA(sgRNA)结合,形成RNP复合物。这个复合物能够识别并结合到基因组中与sgRNA互补的特定DNA序列。2.**PAM序列识别**:SpCas9需要一个称为原间隔子相邻基序(PAM)的特定序列作为识别目标DNA的先决条件。对于SpCas9,这个PAM序列通常是5'-NGG-3'。3.**DNA切割**:一旦RNP复合物与目标DNA结合,SpCas9就会在PAM序列的3个碱基对的上游位置切割DNA双链,产生一个双链断裂(DSB)。4.**引发DNA修复**:DNA双链断裂触发细胞的DNA修复机制,包括同源定向修复(HDR)和非同源末端连接(NHEJ)。研究人员可以利用这些修复机制来插入、删除或替换特定的DNA序列。5.**基因修改**:通过HDR,可以在断裂的DNA两端引入特定的DNA模板,从而实现精确的基因编辑。而NHEJ通常会导致小的插入或缺失(indel),这可以用来产生基因的敲除或敲入。6.**提高编辑效率**:为了提高SpCas9的编辑效率,研究人员可能会使用优化的sgRNA设计、蛋白质工程或嵌合融合蛋白等策略。
使用PreScissionProtease进行蛋白质切割后,可以采用以下方法来提高产品的纯度:1.**亲和层析**:利用GST标签或His标签等进行一步或多步亲和层析,以高纯度分离目的蛋白。2.**离子交换层析**:根据蛋白质的电荷特性,使用阳离子或阴离子交换层析进一步纯化蛋白质。3.**凝胶渗透层析**:通过分子大小的排阻,去除分子量较大或较小的杂质。4.**反向层析**:使用反相高效液相色谱(HPLC)技术,根据蛋白质与固定相的疏水相互作用进行分离。5.**超滤/透析**:使用超滤膜或透析袋去除低分子量的杂质,如盐分、缓冲液成分或小分子蛋白质。6.**二次亲和层析**:在初次亲和层析后,可以进行二次亲和层析以进一步提高纯度。7.**蛋白质纯化柱**:使用商业化的蛋白质纯化柱,如GST-Sepharose或Ni-NTA柱,进行快速纯化。8.**等电聚焦电泳**:通过等电聚焦电泳(IEF)分离具有不同等电点的蛋白质。9.**SDS-PAGE**:使用SDS-PAGE凝胶电泳分析蛋白质的纯度,并可通过凝胶切片回收相对纯净的蛋白质条带。10.**质谱分析**:利用质谱技术鉴定蛋白质的确切质量和序列来确保蛋白质的纯度和正确性。去泛素化酶可以去除泛素化标记,这一步骤是泛素化过程的逆转过程,它允许细胞对泛素化事件进行精细调控。

PreScissionProtease(PSP)是一种在蛋白质纯化和分析中使用的酶,具有以下特点:1.**特异性识别**:PSP能在低温(4°C)下特异性识别八肽序列Leu-Glu-Val-Leu-Phe-Gln-Gly-Pro或五肽序列Leu-Phe-Gln-Gly-Pro,并在Gln和Gly之间进行酶切。2.**应用**:PSP常用于去除融合蛋白中的GlutathioneS-transferase(GST)、His等标签,有助于纯化目的蛋白。3.**纯度高**:PSP的纯度达到95%以上,确保了实验的准确性和重复性。4.**稳定性好**:PSP在含有50%甘油的储存缓冲液中,-80℃长期储存,有效期2年;小量分装-20℃保存,有效期6个月。5.**酶活定义**:在5℃条件下反应16小时,能够切割100μg的GST标签蛋白达90%以上所需的酶量定义为一个活性单位。6.**兼容性强**:PSP的酶切体系中可以兼容1%TritonX-100、Tween-20或NP-40,10mMEDTA和500mMNaCl。7.**注意事项**:某些化合物如100mMZnCl2、4mMAEBSF和100μMChymostatin会抑制PSP的酶活性50%以上。8.**优化酶切效率**:建议进行预实验摸索实验浓度,实际操作中,建议酶用量1:25-1:100U/μg融合蛋白。将含有重组质粒的表达载体转化到宿主细胞中,通常是大肠杆菌或其他合适的细胞系。Recombinant Human LRP-5Protein,mFc Tag
在CRISPR-Cas9等基因编辑技术中,使用Pfu DNA Polymerase进行修复模板的合成。Recombinant Biotinylated Human CD163 Protein,His-Avi Tag
大肠杆菌表达的重组抑肽酶(Aprotinin)是一种通过基因工程技术在大肠杆菌中生产的蛋白酶抑制剂,具有以下特性和应用:1.**来源**:重组抑肽酶是通过大肠杆菌(E.coli)表达系统生产的,确保了无动物源性成分,减少了病毒污染的风险。2.**结构**:它是一种单体球状蛋白,由58个氨基酸组成,具有三个交联二硫键的单个多肽链。3.**功能**:作为一种竞争性、可逆的丝氨酸蛋白酶抑制剂,重组抑肽酶能够抑制胰蛋白酶、糜蛋白酶、激肽释放酶和血纤维蛋白溶酶等的活性。4.**应用**:在生物技术过程中,重组抑肽酶可以替代动物源性抑肽酶,用于重组蛋白生产中抑制丝氨酸蛋白酶的活性,以及在细胞培养等过程中。5.**产品信息**:通常以粉末形式提供,具有明确的货号和规格,如1mg或10mg的包装。6.**产品性质**:包括外观、溶解度、纯度、蛋白含量、酶浓度和活性定义等详细参数。7.**储存条件**:冻干粉在2~8℃保存,有效期为2年。8.**使用方法**:推荐的结合pH>6.0,在pH<3.0的条件下不结合,可直接使用0.9%NaCl溶解,溶解后可-20℃储存。9.**注意事项**:产品作科研用途,操作时需穿着实验服并佩戴一次性手套。Recombinant Biotinylated Human CD163 Protein,His-Avi Tag
重组人TNFR2蛋白是一种在哺乳动物细胞中表达的重组蛋白,融合了hFc标签,便于纯化和检测。TNFR2(TumorNecrosisFactorReceptor2)是TNF-α的另一种受体,主要参与免疫调节、组织修复和细胞存活等生物学过程。与TNFR1不同,TNFR2主要在免疫细胞(如T细胞、B细胞、树突状细胞)和非免疫细胞(如内皮细胞、成纤维细胞)上表达,且其信号转导主要促进细胞存活和组织修复。TNFR2的功能与机制TNFR2通过其胞外区与TNF-α结合,启动下游的信号通路。TNFR2的信号转导依赖于其胞内段的结构域,能够启动NF-κB、MAPK等信号通路,进而调节细胞的存活、增殖和组织修复。...