Co-IP(免疫共沉淀)技术主要用于研究蛋白质之间的相互作用,其实验设计如下:
1. 样品准备:Co-IP实验通常有两种,一种是内源性蛋白相互作用验证,一种是非内源性蛋白相互作用验证。内源性相互作用通过质粒共转染的方式将两种蛋白转染至同一细胞内表达;非内源性相互作用则是将含有靶蛋白的组织进行预处理及细胞裂解获得细胞裂解液。
2. 沉淀诱饵蛋白:利用磁珠偶联抗体沉淀诱饵蛋白。在样品中加入磁珠偶联抗体,抗体会与诱饵蛋白结合,利用磁铁将磁珠拉下,同时诱饵蛋白会一起被沉淀出来。
3. SDS-PAGE及WB检测:得到沉淀后,需要验证沉淀中是否存在相互作用蛋白。先利用SDS-PAGE将蛋白复合物分离,随后利用WB检测是否存在靶蛋白。
4. 实验对照设置:为了避免“假阳性”,需要设置正确的对照,包括阴性对照和阳性对照(Input组)。Input组为直接利用抗体对细胞裂解液进行WB检测,验证细胞裂解液中存在蛋白。
5. 结果真实性:确保共沉淀的蛋白是由所加入的抗体沉淀得到的,而并非外源非特异蛋白。使用单克隆抗体有助于避免污染的发生。
免疫沉淀技术是什么?北京IP免疫沉淀实验原理
免疫沉淀纯化所得抗原纯度低一般有多种原因:
1. 非特异性蛋白污染
如果洗脱所得抗原纯度较低,则有几种方法可以进行优化。在结合或洗涤缓冲液中加入去污剂或其他可以降低非特异性结合的组分。使用普通微珠预纯化样本还可以降低非目标分子的共纯化。此外,还可以使用无关蛋白 (如BSA) 封闭微珠 。
2. 抗体污染
使用蛋白A、G或A/G的经典免疫沉淀实验中会出现抗体与抗原共洗脱的情况。如果共洗脱会影响下游分析,则需要使用抗体通过共价连接固定至微珠的方法进行实验,如Pierce 直接 IP 或交联 IP 的形式。
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免疫沉淀是一种强大的生物技术,在生命科学研究中发挥着至关重要的作用。它的原理基于抗原与抗体的特异性结合。通过使用针对特定目标蛋白的抗体,将其与含有该蛋白的复杂混合物进行孵育,抗体能够识别并结合目标蛋白,形成免疫复合物。随后,借助特定的方法,如离心或磁珠分离,将这些复合物从混合物中沉淀出来,从而实现对目标蛋白的分离和富集。免疫沉淀在蛋白质研究领域应用很广的。它可以用于确定蛋白质之间的相互作用。例如,研究人员想了解某个蛋白质是否与其他蛋白质形成复合物来发挥功能,通过免疫沉淀将该蛋白及其结合伙伴一起沉淀下来,再通过后续的分析手段,如质谱,就能明确其相互作用的伙伴。此外,免疫沉淀还能用于检测蛋白质的修饰状态,如磷酸化、甲基化等,为深入理解蛋白质的功能调控机制提供关键线索。
RIP实验步骤通常包括:
1. 细胞收集与交联:培养细胞至适当密度。使用交联剂(如甲醛)进行交联,以固定蛋白质-RNA复合物。
2. 细胞裂解:收集细胞并进行裂解,释放RNA-蛋白质复合物。在裂解过程中添加蛋白酶抑制剂以防止蛋白质降解。
3. 超声处理:使用超声波破坏细胞,获得更小的染色质片段,这有助于后续步骤中抗体的接触。
4. 除去细胞碎片:通过离心去除细胞碎片和未裂解的细胞,收集含RNA-蛋白质复合物的上清液。
5. 免疫沉淀:将针对特定RNA结合蛋白(RBP)的抗体加入到上清液中。孵育一段时间,使抗体与目标蛋白充分结合。
6. 捕获免疫复合物:添加蛋白A或蛋白G结合的磁珠或琼脂糖珠。孵育使抗体-蛋白质-RNA复合物与珠子结合。
7. 洗涤:多次洗涤珠子以去除未特异性结合的蛋白质和RNA。
8. 洗脱与逆转交联:使用适当的缓冲液洗脱免疫复合物。使用蛋白酶K处理样品以逆转交联,释放RNA。
9. RNA提取与纯化:从免疫沉淀样品中提取RNA,并进行纯化。
10. RNA分析:使用qPCR、Northern blot、RNA-Seq等方法分析沉淀的RNA,以确定与目标蛋白相互作用的RNA种类。
免疫沉淀纯化所得抗原量低是什么原因?
免疫沉淀技术在解开蛋白质复合物的神秘面纱方面发挥着关键作用。蛋白质复合物在细胞的生命活动中执行着至关重要的功能,然而它们的结构和组成往往极其复杂。免疫沉淀技术为我们提供了一种有效的手段来分离和研究这些复合物。通过精心设计的实验,选择针对复合物中特定成分的抗体,能够将整个复合物从细胞裂解液中沉淀下来。随后,利用先进的分析技术,如质谱分析、蛋白质晶体学等,可以确定复合物中各成分的种类、比例以及相互作用的界面。这对于理解酶的催化机制、蛋白质的运输和定位、细胞骨架的形成等重要生物学过程具有深远的意义。例如,在研究线粒体呼吸链复合物时,免疫沉淀技术帮助我们明确了各个蛋白质亚基的组成和相互作用方式,从而深入了解了能量产生的分子机制。此外,免疫沉淀技术还能够揭示蛋白质复合物在不同生理条件或疾病状态下的变化。这为疾病的诊断和医疗提供了新的靶点和思路,为生物医药领域的发展注入了强大的动力。免疫沉淀和免疫共沉淀的区别?广州ChIP免疫沉淀实验视频
免疫沉淀技术IP是什么?北京IP免疫沉淀实验原理
ChIP实验的基本步骤包括:
1. 交联(Crosslinking):细胞被甲醛等交联剂处理,使得蛋白质和DNA之间的相互作用被固定,形成稳定的蛋白质-DNA复合物。
2. 细胞裂解:裂解细胞,释放染色质,同时保持蛋白质-DNA复合物的完整性。
3. 超声或酶解:通过超声或酶解将染色质切割成较小的片段,以便于后续步骤中的免疫沉淀。
4. 免疫沉淀(Immunoprecipitation):加入针对特定组蛋白修饰或转录因子的抗体,这些抗体会特异性地结合到目标蛋白质上。
5. 捕获复合物:使用蛋白A或蛋白G结合的珠子捕获抗体-蛋白质-DNA复合物。
6. 洗涤:洗涤珠子以去除未特异性结合的蛋白质和DNA片段。
7. 逆转录交联:将捕获的复合物从珠子上洗脱,并进行逆转录交联,使固定的蛋白质-DNA复合物分离。
8. DNA纯化:纯化从免疫沉淀中得到的DNA片段。
9. 分析:通过qPCR、芯片分析(ChIP-chip)或高通量测序(ChIP-seq)等方法分析沉淀的DNA片段,以确定特定蛋白质在基因组上的结合位点。
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