收藏查看我的收藏0有用+1已投票0细胞培养编辑锁定本词条由“科普中国”科学百科词条编写与应用工作项目审核。细胞培养（cellculture）是指在体外模拟体内环境（无菌、适宜温度、酸碱度和一定营养条件等），使之生存、生长、繁殖并维持主要结构和功能的一种方法。细胞培养也叫细胞克隆技术，在生物学中的正规名词为细胞培养技术。不论对于整个生物工程技术，还是其中之一的生物克隆技术来说，细胞培养都是一个必不可少的过程，细胞培养本身就是细胞的大规模克隆。细胞培养技术可以由一个细胞经过大量培养成为简单的单细胞或极少分化的多细胞，这是克隆技术必不可少的环节，而且细胞培养本身就是细胞的克隆。细胞培养技术是细胞生物学研究方法中重要和常用技术，通过细胞培养既可以获得大量细胞，又可以借此研究细胞的信号转导、细胞的合成代谢、细胞的生长增殖等。[1]中文名细胞培养外文名cellculture别名细胞克隆术语细胞培养技术地位生物技术中基础的技术常用培养基无钙、镁、离子溶液目录1分类2环境及条件▪环境因素▪营养条件3设施器材4一般过程5具体步骤6注意事项细胞培养分类编辑动物细胞培养高速冷冻离心机在所有的细胞离体培养中，困难的是动物细胞培养。脐带是哺乳类连接胎儿和胎盘的管状结构。脐带中通过尿膜的血管即脐动脉和脐静脉。江苏原代细胞技术
换液时间隔一般较短。原代细胞培养问题解答1、原代细胞与细胞系有什么区别？根据传统定义，自组织收获和接种的细胞被称为原代细胞[Freshney,.(1987)..(NewYork,.)].这类细胞直接从组织分离，生命周期有限，经数次传代后会逐渐停止生长。原代细胞在有限的生命周期内需掌握好细胞的生长空间，以保持细胞群中基因型和表型的一致性。细胞系是不断生长、分化的细胞群，因其经过遗传改造，致使其具有无限增长的潜能。体外生长的细胞系用于医疗或科研。但实际上，经过长时间、连续的传代培养后，细胞系随着代数的增加，细胞的基因型和表型都有可能发生改变。需要指出的是，在不同的科研小组中这些术语的定义会有所不同。许多研究员不用细胞系这个词表示细胞群，除非细胞经过了遗传改造。2、倍增和代数有什么区别？倍增是培养物中细胞总数的翻倍，通常是指细胞指数或对数生长期。代数是指细胞群从培养瓶中移出，传代培养过程的次数，传代培养的目的，是使细胞处于低密度以刺激其进一步生长。3、接收到的冻存细胞该如何处理？收到包装箱后，立即将冻存细胞从干冰移入液氮中冻存。此过程尽量快，以避免升温。不要将细胞储存在-80℃，这样会对细胞造成不可挽回的伤害。湖北组织原代细胞购买骨骼肌的一般形态特征肌细胞呈纤维状，不分支，有明显横纹，核很多，且都位于细胞膜下方。
磷酸缓冲盐溶液),注射器，灌流针，移液枪，培养皿，实验动物，无菌水。二、组织块制备选择符合实验动物伦理规范的方式处死动物，将动物浸泡在装有70％医用酒精的烧杯中数分钟，用无菌剪暴露心脏，注射器吸取无菌pbs连接灌流针进行心脏灌流以去除循环中的血液，对所需的或组织进行取材，将组织移至无菌操作台中，根据实验需求用无菌镊和无菌剪修剪出合适的大小，组织块不宜过厚以免影响培养效果，可根据实验需要选用胶原酶去除纤维组织。三、一体式原代细胞爬片瓶的使用根据实验需求，可选用血清，明胶，多聚赖氨酸等基质预先包被培养瓶底部，以使细胞更好的贴壁生长。向加样口6加入适当培养基，轻轻晃动培养瓶，使培养基覆盖培养瓶底部一薄层即可。根据组织块的大小，用移液枪或镊子将组织块通过加样口均匀放置在培养瓶底部，根据实验需求选择合适的种植密度。注射器吸取适量无菌水然后向正压口2中注入，在水的压力下，通过联动装置即可推动纤维板8下移，待纤维板和组织块达到合适的接触程度时停止注水，继续向加样口加入适量的培养基浸没组织块，旋紧瓶盖，动作轻柔的将培养瓶放进培养箱中。1-2天后镜下观察细胞生长状态以及生长密度。
易操作原代细胞和细胞系的比较3.原代细胞的应用由于原代细胞生物学特性未发生很大改变，接近和反映体内生长特性，因此是：(1)研究生物体细胞的生长、代谢、繁殖提供有力的工具；(2)更好实现医疗的诊治模式，实现个体化用药的目的。第二部分：原代细胞分离和培养技术原代培养的原理将动物机体的各种组织从机体中取出，经各种酶(常用胰蛋白酶/胶原酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理，分散成单细胞，置合适的培养基中培养，使细胞得以生存、生长和繁殖，这一过程称原代培养。主要包括取材——分离——培养等3部分；在原代细胞应用较多的包括：组织（如实体瘤、皮肤等）、悬浮细胞的取材等。下面依次介绍：一、组织的取材病人自体的原代细胞由于更接近临床患者标本，可以更好实现医疗的诊治模式，实现个体化用药的目的。所以对病人自体细胞体外分离与培养十分必要。基本过程如下图所示：原代细胞的分离步骤备注：上图细胞为肉瘤患者的原代细胞具体步骤如下：1.在无菌条件下的冰上对新鲜离体的组织，剔除包膜及坏死组织，无菌PBS清洗3-5次；切成约1mm3组织块；2.加入2mmol的EDTA，摇匀后放置冰上约30-60min；3.离心，并加入胶原酶消化（含蛋白酶）；4.消化期间。细胞操作都需严格按照无菌操作进行。
在短时间内即可大量扩增，并产生杀死细胞。的种类繁多，肉眼可见，漂浮于培养液面上，可呈丝状、管状或树枝状等。2.合适的温度一般哺乳类与禽类细胞在体外培养的适宜温度是37～38℃，不适宜的环境温度会影响细胞的生长。细胞对低温的耐受能力要强于对高温的耐受能力，在低温下，细胞的代谢活力及核分裂能力降低。若温度不低于0℃，虽然细胞代谢受到影响，但无损伤作用；25～35℃时，细胞以缓慢的速度生长；但若被置于40℃数小时，则不不利于细胞生存、生长，甚至可导致其死亡。3.适宜的渗透压高渗溶液或低渗溶液会引起细胞发生褶皱、肿胀、破裂。因此，渗透压是体外培养细胞的重要条件之一。多数体外培养的细胞对渗透压都有一定的耐受能力，实际应用中，260～320mmol/L的渗透压可适用于大多数细胞。4．气体环境与pH细胞的体外培养需要理想的气体环境，氧气、二氧化碳是细胞生存的必要条件。氧气参与细胞的三羧酸循环，为细胞生存、代谢与合成提供能量；二氧化碳既是细胞的代谢产物，是细胞生长的必需成分，又与维持培养液的pH有关。大多数细胞适宜的pH范围往往是～。在开放式培养中，以5%的二氧化碳气体比例为宜。重组病毒以其高效和多样性，是非常有效的将外源基因导入细胞的方法。湖南兔原代细胞服务
细胞形态：细胞梭形，不规则，贴壁培养。江苏原代细胞技术
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